| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表(ABBREVIATION) | 第8-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-23页 |
| 1 快速老化小鼠SAMP8和抗快速老化小鼠SAMR1的特点 | 第14页 |
| 2 SAMP8小鼠脑内的病理改变 | 第14-15页 |
| 2.1 脑部形态学改变 | 第14页 |
| 2.2 β淀粉样蛋白 | 第14-15页 |
| 2.3 β淀粉样蛋白引起的氧化应激 | 第15页 |
| 2.4 SAMP8小鼠脑内神经递质的变化 | 第15页 |
| 3 茶氨酸在体内的吸收、代谢 | 第15-16页 |
| 3.1 茶树中茶氨酸的合成与代谢 | 第15页 |
| 3.2 茶氨酸在动物体内的代谢 | 第15-16页 |
| 4 茶氨酸的健康功效及机制 | 第16-21页 |
| 4.1 抗肿瘤及其机制 | 第16-17页 |
| 4.2 脑神经保护作用及机制 | 第17-18页 |
| 4.3 抗抑郁 | 第18页 |
| 4.4 增强免疫作用及其作用机理 | 第18-19页 |
| 4.5 增强学习记忆能力,改善认知 | 第19页 |
| 4.6 降血压功效 | 第19页 |
| 4.7 抗运动性疲劳 | 第19-20页 |
| 4.8 其他 | 第20-21页 |
| 5 研究的目的与意义 | 第21-22页 |
| 6 技术路线图 | 第22-23页 |
| 第二章 L-茶氨酸对Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞损伤的影响 | 第23-29页 |
| 1 材料与方法 | 第23-25页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第23-24页 |
| 1.2 主要仪器 | 第24页 |
| 1.3 实验方法 | 第24-25页 |
| 1.3.1 PC12细胞的复苏 | 第24页 |
| 1.3.2 Aβ_(25-35)诱导PC12细胞损伤模型的建立 | 第24页 |
| 1.3.3 L-茶氨酸对正常PC12细胞生长存活的影响 | 第24页 |
| 1.3.4 L-茶氨酸对Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞损伤的保护作用 | 第24页 |
| 1.3.5 L-茶氨酸对Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞损伤的SOD酶活力及MDA含量的影响 | 第24-25页 |
| 1.3.6 统计方法 | 第25页 |
| 2 结果与分析 | 第25-27页 |
| 2.1 L-茶氨酸对PC12细胞存活率的影响 | 第25页 |
| 2.2 Aβ_(25-35)对PC12细胞生长及存活率的影响 | 第25-26页 |
| 2.3 L-茶氨酸对Aβ_(25-35)诱导损伤的PC12细胞存活率的影响 | 第26-27页 |
| 2.4 L-茶氨酸对Aβ_(25-35)诱导PC12细胞损伤的MDA含量及SOD酶活力的影响 | 第27页 |
| 3 讨论 | 第27-28页 |
| 4 结论 | 第28-29页 |
| 第三章 L-茶氨酸对SAMP8小鼠脑组织生化指标的影响 | 第29-38页 |
| 1 材料与方法 | 第29-32页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第29-30页 |
| 1.2 主要仪器 | 第30页 |
| 1.3 实验方法 | 第30-32页 |
| 1.3.1 动物分组及处理方法 | 第30页 |
| 1.3.2 脑组织相关生化指标的测定 | 第30页 |
| 1.3.3 脑组织总蛋白的提取 | 第30页 |
| 1.3.4 脑组织总蛋白含量的测定 | 第30页 |
| 1.3.5 脑组织Aβ_(42)含量的测定 | 第30-31页 |
| 1.3.6 脑组织脂褐素含量的测定 | 第31页 |
| 1.3.7 脑组织AGEs含量的测定 | 第31页 |
| 1.3.8 脑组织MDA含量及SOD、CAT、GSH-PX活力的测定 | 第31页 |
| 1.3.9 脑组织DA、AChE含量的测定 | 第31页 |
| 1.3.10 脑组织ACH、ChAT含量的测定 | 第31-32页 |
| 1.3.11 统计方法 | 第32页 |
| 2 结果与分析 | 第32-36页 |
| 2.1 各处理组小鼠体重的变化 | 第32页 |
| 2.2 各处理组小鼠脑组织中Aβ_(42)的含量 | 第32-33页 |
| 2.3 各处理组小鼠脑组织中MDA的含量及CAT、SOD、GSH-PX活力的变化 | 第33-34页 |
| 2.4 各处理组小鼠脑组织内脂褐素和AGEs含量的变化 | 第34-35页 |
| 2.5 各处理组小鼠脑皮层中DA、ACH、AchE和CHAT含量的变化 | 第35-36页 |
| 3 讨论 | 第36-37页 |
| 4 结论 | 第37-38页 |
| 第四章 L-茶氨酸对SAMP8小鼠脑病理组织学的影响 | 第38-48页 |
| 1 材料与方法 | 第38-42页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第38-40页 |
| 1.2 主要仪器 | 第40页 |
| 1.3 实验方法 | 第40-42页 |
| 1.3.1 小鼠灌注取材 | 第40页 |
| 1.3.2 透射电镜样品的制备 | 第40页 |
| 1.3.3 HE染色 | 第40页 |
| 1.3.4 刚果红染色 | 第40-41页 |
| 1.3.5 尼氏染色 | 第41页 |
| 1.3.6 髓鞘染色 | 第41页 |
| 1.3.7 TUNEL染色 | 第41页 |
| 1.3.8 免疫组化 | 第41页 |
| 1.3.9 统计方法 | 第41-42页 |
| 2 结果与分析 | 第42-46页 |
| 2.1 各处理组小鼠脑组织HE染色的结果 | 第42页 |
| 2.2 各处理组小鼠脑组织刚果红染色的结果 | 第42-43页 |
| 2.3 各处理组小鼠脑神经元尼氏体染色的结果 | 第43-44页 |
| 2.4 各处理组小鼠脑神经元髓鞘染色的结果 | 第44-45页 |
| 2.5 各处理组小鼠脑皮层透射电镜的结果 | 第45页 |
| 2.6 TUNEL法检测各处理组小鼠皮层神经元的凋亡 | 第45-46页 |
| 2.7 各处理组小鼠脑皮层与海马Aβ42免疫染色的结果 | 第46页 |
| 3 讨论 | 第46-47页 |
| 4 结论 | 第47-48页 |
| 第五章 L-茶氨酸对SAMP8小鼠脑内AΒ相关基因及蛋白表达的影响 | 第48-57页 |
| 1 材料与方法 | 第48-52页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第48-49页 |
| 1.2 主要仪器 | 第49页 |
| 1.3 实验方法 | 第49-52页 |
| 1.3.1 脑组织RNA提取 | 第49页 |
| 1.3.2 RT-PCR | 第49-51页 |
| 1.3.3 WesternBlot实验 | 第51-52页 |
| 1.3.4 统计方法 | 第52页 |
| 2 结果与分析 | 第52-55页 |
| 2.1 各处理组小鼠脑皮层mRNA的鉴定 | 第52页 |
| 2.2 L-茶氨酸对SAMP8小鼠脑皮层APP代谢通路中相关基因表达的影响 | 第52-53页 |
| 2.3 L-茶氨酸对SAMP8小鼠脑海马βAPP、PS1、IDE基因表达的影响.. | 第53-54页 |
| 2.4 L-茶氨酸对SAMP8小鼠脑皮层Aβ相关蛋白表达的影响 | 第54-55页 |
| 3 讨论 | 第55-56页 |
| 4 结论 | 第56-57页 |
| 第六章 全文总结 | 第57-59页 |
| 1 主要研究结果 | 第57页 |
| 2 创新点 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 作者简介 | 第68页 |
