| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 第一章 综述 | 第12-21页 |
| 1 真菌多糖的研究进展 | 第12-16页 |
| 1.1 真菌多糖的提取分离 | 第12-14页 |
| 1.1.1 真菌多糖的提取 | 第12-13页 |
| 1.1.2 真菌多糖的分离纯化 | 第13-14页 |
| 1.2 真菌多糖的结构鉴定 | 第14-15页 |
| 1.3 真菌多糖的活性 | 第15-16页 |
| 1.3.1 抗肿瘤活性 | 第15页 |
| 1.3.2 免疫调节作用 | 第15页 |
| 1.3.3 抗病毒 | 第15-16页 |
| 1.3.4 降血糖功能 | 第16页 |
| 1.3.5 抗衰老、抗氧化活性 | 第16页 |
| 2 姬松茸多糖的研究进展 | 第16-20页 |
| 2.1 姬松茸多糖的提取分离研究 | 第17页 |
| 2.2 姬松茸多糖的结构研究 | 第17-18页 |
| 2.3 姬松茸多糖的活性研究 | 第18-20页 |
| 2.3.1 抗肿瘤活性 | 第18页 |
| 2.3.2 免疫活性 | 第18-19页 |
| 2.3.3 抗氧化活性 | 第19页 |
| 2.3.4 抗基因毒性 | 第19页 |
| 2.3.5 其他 | 第19-20页 |
| 3 本课题研究的目的意义及内容 | 第20-21页 |
| 第二章 低分子量姬松茸多糖的分离纯化 | 第21-40页 |
| 1 材料 | 第21-22页 |
| 1.1 主要材料 | 第21页 |
| 1.2 主要试剂 | 第21页 |
| 1.3 仪器与设备 | 第21-22页 |
| 2 方法 | 第22-27页 |
| 2.1 低分子量姬松茸粗多糖的制备 | 第22-24页 |
| 2.1.1 姬松茸粗多糖的提取 | 第22页 |
| 2.1.2 多糖含量和蛋白含量的测定 | 第22-23页 |
| 2.1.3 酶结合Sevag法脱蛋白 | 第23页 |
| 2.1.4 超滤 | 第23-24页 |
| 2.2 LAP的离子交换层析分离 | 第24-25页 |
| 2.2.1 DEAE-52层析柱的处理 | 第24-25页 |
| 2.2.2 DEAE-52离子交换条件的确定 | 第25页 |
| 2.3 级分多糖LAP-1～4的理化性质 | 第25-26页 |
| 2.3.1 形状及溶解性 | 第25页 |
| 2.3.2 多糖和蛋白的含量 | 第25页 |
| 2.3.3 显色反应 | 第25-26页 |
| 2.4 LAP-1～4的紫外扫描 | 第26页 |
| 2.5 LAP-1～4单糖组成分析 | 第26页 |
| 2.6 LAP-1～4的纯度鉴定 | 第26-27页 |
| 2.7 级分多糖LAP-2的凝胶柱层析分离及其分离组分的纯度鉴定 | 第27页 |
| 2.7.1 级分多糖LAP-2的凝胶柱层析分离 | 第27页 |
| 2.7.2 LAP-2的分离组分的纯度鉴定 | 第27页 |
| 3 结果与分析 | 第27-39页 |
| 3.1 低分子量姬松茸粗多糖的制备 | 第27-29页 |
| 3.1.1 姬松茸粗多糖的制备 | 第27-28页 |
| 3.1.2 超滤 | 第28-29页 |
| 3.2 DEAE-52离子交换层析分离纯化 | 第29-31页 |
| 3.2.1 DEAE-52离子交换层析条件的确定 | 第29-31页 |
| 3.2.2 LAP的离子交换层析 | 第31页 |
| 3.3 级分多糖LAP-1～4的理化性质 | 第31-32页 |
| 3.3.1 性状及溶解性 | 第31页 |
| 3.3.2 多糖和蛋白含量 | 第31-32页 |
| 3.3.3 显色反应 | 第32页 |
| 3.4 LAP-1～4的紫外扫描图谱 | 第32-33页 |
| 3.5 LAP-1～4的单糖组成 | 第33-34页 |
| 3.6 LAP-1～4的纯度鉴定 | 第34-35页 |
| 3.7 LAP-2的Sephadex G100凝胶过滤层析 | 第35-39页 |
| 3.7.1 Sephadex G100凝胶过滤条件的确定 | 第35-37页 |
| 3.7.2 LAP-2的凝胶过滤分离 | 第37-38页 |
| 3.7.3 LAP-2-I的纯度鉴定 | 第38-39页 |
| 4 本章小结 | 第39-40页 |
| 第三章 LAP-2-I的结构分析 | 第40-50页 |
| 1 实验材料 | 第40-41页 |
| 1.1 主要原料 | 第40页 |
| 1.2 主要试剂 | 第40页 |
| 1.3 仪器与设备 | 第40-41页 |
| 2 实验方法 | 第41-43页 |
| 2.1 LAP-2-I的理化性质 | 第41页 |
| 2.1.1 性状及溶解性 | 第41页 |
| 2.1.2 多糖和蛋白的含量 | 第41页 |
| 2.1.3 比旋光度 | 第41页 |
| 2.2 单糖组成 | 第41页 |
| 2.3 光谱分析 | 第41页 |
| 2.3.1 紫外扫描 | 第41页 |
| 2.3.2 红外光谱 | 第41页 |
| 2.4 高碘酸氧化 | 第41-42页 |
| 2.5 Smith降解 | 第42页 |
| 2.6 X衍射分析 | 第42页 |
| 2.7 刚果红实验 | 第42-43页 |
| 3 结果与分析 | 第43-49页 |
| 3.1 LAP-2-I的理化性质 | 第43页 |
| 3.2 LAP-2-I的单糖组成分析 | 第43-44页 |
| 3.3 LAP-2-I的光谱分析 | 第44-45页 |
| 3.3.1 紫外扫描 | 第44页 |
| 3.3.2 红外扫描 | 第44-45页 |
| 3.4 高碘酸氧化 | 第45-46页 |
| 3.5 Smith降解 | 第46-48页 |
| 3.6 X衍射分析 | 第48页 |
| 3.7 刚果红实验 | 第48-49页 |
| 4 本章小结 | 第49-50页 |
| 第四章 低分子量姬松茸多糖的抗肿瘤活性研究 | 第50-62页 |
| 1 实验材料 | 第50-51页 |
| 1.1 主要原料 | 第50页 |
| 1.2 主要试剂 | 第50-51页 |
| 1.3 仪器与设备 | 第51页 |
| 2 实验方法 | 第51-52页 |
| 2.1 制备多糖储备液 | 第51页 |
| 2.2 细胞体外传代培养 | 第51页 |
| 2.3 检测细胞存活率 | 第51-52页 |
| 2.4 多糖对肿瘤细胞增殖的影响 | 第52页 |
| 2.5 多糖对细胞凋亡的影响 | 第52页 |
| 3 结果分析 | 第52-61页 |
| 3.1 多糖对肿瘤细胞的增殖抑制实验 | 第52-58页 |
| 3.1.1 多糖对SGC-7901肿瘤细胞的增殖抑制实验 | 第53-56页 |
| 3.1.2 多糖对DLD-1肿瘤细胞的增殖抑制实验 | 第56-58页 |
| 3.2 多糖对肿瘤细胞凋亡的影响 | 第58-61页 |
| 3.2.1 SGC-7901细胞凋亡实验 | 第59-60页 |
| 3.2.2 DLD-1细胞凋亡实验 | 第60-61页 |
| 4 本章小结 | 第61-62页 |
| 第五章 总结 | 第62-64页 |
| 1 结论 | 第62-63页 |
| 2 本课题特色及创新点 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
