| 致谢 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第1章 绪论 | 第14-28页 |
| 1.1 白桦脂酸抗癌活性 | 第14-18页 |
| 1.1.1 白桦脂酸抗癌机理研究 | 第15-17页 |
| 1.1.2 联合治疗 | 第17-18页 |
| 1.2 炎症与肿瘤 | 第18-20页 |
| 1.2.1 白桦脂酸活性的主要分子靶标 | 第19-20页 |
| 1.2.2 白桦脂酸的抗炎和抗肿瘤活性机理 | 第20页 |
| 1.3 Anti-HIV | 第20-23页 |
| 1.4 白桦脂酸的其他生物学活性 | 第23页 |
| 1.5 白桦脂酸制备方法研究进展 | 第23-26页 |
| 1.5.1 直接提取法 | 第23-24页 |
| 1.5.2 化学合成法 | 第24页 |
| 1.5.3 生物转化 | 第24-25页 |
| 1.5.4 代谢工程 | 第25-26页 |
| 1.6 论文研究内容与意义 | 第26-28页 |
| 第2章 具有转化白桦脂醇功能的工程酿酒酵母构建研究 | 第28-44页 |
| 2.1 实验材料 | 第29-31页 |
| 2.1.1 菌株和质粒 | 第29-30页 |
| 2.1.2 引物 | 第30页 |
| 2.1.3 主要材料与试剂 | 第30页 |
| 2.1.4 主要仪器与设备 | 第30-31页 |
| 2.1.5 培养基 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-35页 |
| 2.2.1 CYP716A12和ATR1基因序列的获得 | 第31-32页 |
| 2.2.2 pESC-URA-CYP716A12质粒构建 | 第32页 |
| 2.2.3 克隆鉴定 | 第32-33页 |
| 2.2.4 pESC-ura-CYP716A12-ATR1质粒构建 | 第33页 |
| 2.2.5 基因工程酿酒酵母的构建 | 第33-35页 |
| 2.3 结果与分析 | 第35-43页 |
| 2.3.1 CYP716A12和ATR1基因序列的鉴定 | 第35-36页 |
| 2.3.2 pESC-ura-CYP716A12质粒构建 | 第36-39页 |
| 2.3.3 pESC-ura-CYP716A12-ATR1质粒构建研究 | 第39-42页 |
| 2.3.4 基于双酶共表达的工程酿酒酵母构建 | 第42-43页 |
| 2.4 本章小结 | 第43-44页 |
| 第3章 微粒体蛋白制备及转化鉴定研究 | 第44-50页 |
| 3.1 实验材料 | 第44-45页 |
| 3.1.1 菌株与培养基 | 第44-45页 |
| 3.1.2 主要材料与试剂 | 第45页 |
| 3.1.3 主要仪器与设备 | 第45页 |
| 3.2 实验方法 | 第45-47页 |
| 3.2.1 微粒体蛋白制备 | 第45-46页 |
| 3.2.2 微粒体蛋白转化 | 第46页 |
| 3.2.3 高效液相色谱检测 | 第46-47页 |
| 3.3 结果与分析 | 第47-49页 |
| 3.4 本章小结 | 第49-50页 |
| 第4章 酿酒酵母ZJUQH311转化白桦脂醇的条件优化研究 | 第50-64页 |
| 4.1 实验材料 | 第50-51页 |
| 4.1.1 菌株与培养基 | 第50-51页 |
| 4.1.2 主要材料与试剂 | 第51页 |
| 4.1.3 主要仪器与设备 | 第51页 |
| 4.2 研究方法 | 第51-54页 |
| 4.2.1 微粒体蛋白制备方法探究 | 第51-52页 |
| 4.2.2 转化产物白桦脂酸的分离制备 | 第52页 |
| 4.2.3 菌体破碎方法优化 | 第52-53页 |
| 4.2.4 S.cerevisiae ZJUQH311微粒体蛋白转化生成白桦脂酸的条件优化实验设计 | 第53-54页 |
| 4.3 结果与分析 | 第54-62页 |
| 4.3.1 微粒体蛋白制备方法探究 | 第54-55页 |
| 4.3.2 菌体破碎方法比较 | 第55-56页 |
| 4.3.3 S.cerevisiae ZJUQH311微粒体蛋白体外转化生成白桦脂酸的条件优化 | 第56-62页 |
| 4.4 本章小结 | 第62-64页 |
| 第5章 总结与展望 | 第64-67页 |
| 5.1 主要结论 | 第64-65页 |
| 5.2 后续研究展望 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-78页 |
| 作者简历 | 第78页 |
| 硕士期间主要学术成果 | 第78页 |
