| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 0 前言 | 第13-30页 |
| 0.1 燕窝概述 | 第13-18页 |
| 0.1.1 来源及产地 | 第13页 |
| 0.1.2 分类 | 第13页 |
| 0.1.3 营养成分 | 第13-16页 |
| 0.1.4 功效与活性 | 第16-18页 |
| 0.2 燕窝糖蛋白分离纯化 | 第18-20页 |
| 0.2.1 糖蛋白提取纯化方法 | 第18-19页 |
| 0.2.2 燕窝糖蛋白分离纯化 | 第19-20页 |
| 0.3 燕窝糖蛋白结构 | 第20-21页 |
| 0.3.1 唾液酸 | 第20页 |
| 0.3.2 唾液酸糖链结构研究 | 第20-21页 |
| 0.3.3 燕窝蛋白结构研究 | 第21页 |
| 0.4 燕窝加工方式 | 第21-23页 |
| 0.4.1 干制燕窝 | 第21页 |
| 0.4.2 罐装燕窝 | 第21-23页 |
| 0.4.3 其它产品 | 第23页 |
| 0.5 燕窝的消化吸收 | 第23-27页 |
| 0.5.1 燕窝的消化 | 第23-24页 |
| 0.5.2 燕窝的吸收 | 第24-27页 |
| 0.6 燕窝抗炎功能 | 第27-29页 |
| 0.7 本论文内容及意义 | 第29-30页 |
| 1 燕窝唾液酸糖蛋白的分离纯化及鉴定 | 第30-47页 |
| 1.1 材料与仪器 | 第30-31页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第30-31页 |
| 1.1.2 仪器设备 | 第31页 |
| 1.2 实验方法 | 第31-34页 |
| 1.2.1 EBNE 制备 | 第31页 |
| 1.2.2 EBNE 性质测定 | 第31-32页 |
| 1.2.2.1 蛋白含量 | 第31-32页 |
| 1.2.2.2 总糖含量 | 第32页 |
| 1.2.2.3 唾液酸含量 | 第32页 |
| 1.2.2.4 SDS-PAGE 电泳 | 第32页 |
| 1.2.2.5 Lectin blot | 第32页 |
| 1.2.3 α 2,3 SGP 及α 2,6 SGP 的分离纯化 | 第32-34页 |
| 1.2.3.1 凝胶过滤层析分离 | 第32-33页 |
| 1.2.3.2 QFF 离子交换层析分离 | 第33页 |
| 1.2.3.3 MAA-Sepharose 4B 及 SNA-Sepharose 4B 制备 | 第33页 |
| 1.2.3.4 MAA-Sepharose 4B 及 SNA-Sepharose 4B 亲和纯化 | 第33-34页 |
| 1.2.4 MALDI TOF-TOF/MS 蛋白鉴定 | 第34页 |
| 1.3 结果与讨论 | 第34-46页 |
| 1.3.1 EBNE 性质分析 | 第34-36页 |
| 1.3.1.1 蛋白质、总糖及唾液酸含量 | 第34-35页 |
| 1.3.1.2 SDS-PAGE 分析 | 第35页 |
| 1.3.1.3 Lectin blot 分析 | 第35-36页 |
| 1.3.2 α 2,3 SGP 及α 2,6 SGP 的纯化结果分析 | 第36-42页 |
| 1.3.2.1 凝胶层析分析 | 第36-39页 |
| 1.3.2.2 离子交换层析分析 | 第39-41页 |
| 1.3.2.3 凝集素亲和层析分析 | 第41-42页 |
| 1.3.3 燕窝 SGP 鉴定结果 | 第42-46页 |
| 1.4 本章小结 | 第46-47页 |
| 2 美拉德反应对燕窝糖蛋白消化吸收的影响 | 第47-63页 |
| 2.1 美拉德反应对燕窝糖蛋白糖基化修饰及消化作用的影响 | 第47-56页 |
| 2.1.1 材料与仪器 | 第47-48页 |
| 2.1.1.1 实验材料 | 第47-48页 |
| 2.1.1.2 仪器设备 | 第48页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第48-50页 |
| 2.1.2.1 样品制备 | 第48页 |
| 2.1.2.2 模拟胃液消化 | 第48-49页 |
| 2.1.2.3 模拟肠液消化 | 第49页 |
| 2.1.2.4 葡萄糖参与美拉德反应 | 第49页 |
| 2.1.2.5 唾液酸含量变化测定 | 第49页 |
| 2.1.2.6 美拉德反应产物模拟胃液消化 | 第49页 |
| 2.1.2.7 美拉德反应产物模拟肠液消化 | 第49页 |
| 2.1.2.8 SDS-PAGE 及 Lectin blot 分析 | 第49-50页 |
| 2.1.3 结果与讨论 | 第50-56页 |
| 2.1.3.1 EBNE 体外模拟消化结果分析 | 第50-51页 |
| 2.1.3.2 糖蛋白糖基化修饰变化分析 | 第51-53页 |
| 2.1.3.3 唾液酸含量变化分析 | 第53页 |
| 2.1.3.4 美拉德反应产物体外消化分析 | 第53-56页 |
| 2.2 美拉德反应对燕窝糖蛋白体外跨膜吸收作用的影响 | 第56-62页 |
| 2.2.1 材料与仪器 | 第56页 |
| 2.2.1.1 实验材料 | 第56页 |
| 2.2.1.2 仪器设备 | 第56页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第56-58页 |
| 2.2.2.1 样品制备 | 第56-57页 |
| 2.2.2.2 Caco-2 细胞培养 | 第57页 |
| 2.2.2.3 WST-1 法测定 Caco-2 细胞增殖活性 | 第57页 |
| 2.2.2.4 Caco-2 单层细胞培养 | 第57页 |
| 2.2.2.5 跨膜电阻值测定 | 第57页 |
| 2.2.2.6 荧光黄透过量测定 | 第57-58页 |
| 2.2.2.7 DEBNE 及 DMEBNE 跨膜转运测定 | 第58页 |
| 2.2.3 结果及讨论 | 第58-62页 |
| 2.2.3.1 DEBNE 及 DMEBNE 对 Caco-2 细胞增殖影响 | 第58-60页 |
| 2.2.3.2 Caco-2 单层细胞形态观察 | 第60页 |
| 2.2.3.3 Caco-2 单层细胞膜完整性 | 第60-61页 |
| 2.2.3.4 DEBNE 及 DMEBNE 肠道跨膜吸收效果 | 第61-62页 |
| 2.3 本章小结 | 第62-63页 |
| 3 燕窝唾液酸糖蛋白体外抗炎活性研究 | 第63-72页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第63-64页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第63页 |
| 3.1.2 仪器设备 | 第63-64页 |
| 3.2 实验方法 | 第64-65页 |
| 3.2.1 样品制备 | 第64页 |
| 3.2.2 RAW264.7 细胞培养 | 第64页 |
| 3.2.3 MTT 法测定 RAW264.7 炎症细胞增殖活性 | 第64-65页 |
| 3.2.4 NO 生成量测定 | 第65页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第65-70页 |
| 3.3.1 RAW264.7 细胞形态变化 | 第65-66页 |
| 3.3.2 不同燕窝糖蛋白对 RAW264.7 炎症细胞增殖活性影响 | 第66-67页 |
| 3.3.3 不同 SGP 对 RAW264.7 炎症细胞增殖活性影响 | 第67-68页 |
| 3.3.4 不同燕窝糖蛋白对 RAW264.7 炎症细胞 NO 生成量的影响 | 第68-69页 |
| 3.3.5 不同 SGP 对 RAW264.7 炎症细胞 NO 生成量的影响 | 第69-70页 |
| 3.4 本章小结 | 第70-72页 |
| 结论 | 第72-73页 |
| 本论文创新点 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
| 个人简历 | 第83页 |
| 发表的学术论文 | 第83-84页 |
