| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 第一章 绪论 | 第8-15页 |
| ·低聚果糖概述 | 第8-12页 |
| ·低聚果糖的结构 | 第8-9页 |
| ·低聚果糖的生理特性 | 第9-10页 |
| ·低聚果糖的生产 | 第10-11页 |
| ·低聚果糖的应用 | 第11-12页 |
| ·合成低聚果糖相关酶的研究 | 第12-13页 |
| ·酶的名称 | 第12页 |
| ·酶的来源、反应机理及酶学性质 | 第12-13页 |
| ·本课题的研究意义 | 第13-14页 |
| ·本课题的研究内容 | 第14-15页 |
| 第二章 法夫酵母新科斯糖及其相关酶的初步分析 | 第15-20页 |
| ·引言 | 第15页 |
| ·主要材料 | 第15-16页 |
| ·仪器与试剂 | 第15-16页 |
| ·菌种 | 第16页 |
| ·培养基 | 第16页 |
| ·发酵培养方法 | 第16页 |
| ·种子培养方法 | 第16页 |
| ·摇瓶培养方法 | 第16页 |
| ·发酵液制备 | 第16页 |
| ·酶活测定方法 | 第16页 |
| ·发酵液中新科斯糖和酶解产物的分析方法 | 第16-17页 |
| ·结果与讨论 | 第17-19页 |
| ·发酵液中新科斯糖的分析 | 第17-18页 |
| ·酶的分析 | 第18-19页 |
| ·结论 | 第19-20页 |
| 第三章 法夫酵母所产新科斯糖的结构鉴定 | 第20-26页 |
| ·引言 | 第20页 |
| ·主要材料 | 第20页 |
| ·仪器与试剂 | 第20页 |
| ·菌种 | 第20页 |
| ·培养基 | 第20页 |
| ·发酵培养方法 | 第20页 |
| ·多糖混合液的制备 | 第20-21页 |
| ·低聚糖的纯化 | 第21页 |
| ·质谱分析条件 | 第21页 |
| ·核磁共振分析条件 | 第21页 |
| ·结果与分析 | 第21-25页 |
| ·低聚糖的纯化 | 第21-22页 |
| ·质谱图谱分析 | 第22-23页 |
| ·~(13)C 核磁共振图谱分析 | 第23-25页 |
| ·结论 | 第25-26页 |
| 第四章 法夫酵母所产新科斯糖酶的初步分离及酶学性质 | 第26-39页 |
| ·引言 | 第26页 |
| ·主要仪器与试剂 | 第26-27页 |
| ·主要仪器 | 第26-27页 |
| ·试剂 | 第27页 |
| ·发酵液 | 第27页 |
| ·酶活测定方法 | 第27页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第27-28页 |
| ·酶的初步纯化 | 第28页 |
| ·硫酸铵沉淀 | 第28页 |
| ·DEAE-Sepharose FF 离子交换层析 | 第28页 |
| ·活性聚丙烯酰胺电泳 | 第28-30页 |
| ·活性电泳工作液的配制 | 第28-29页 |
| ·活性电泳的制备过程 | 第29-30页 |
| ·活性电泳谱带的制备 | 第30页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第30-31页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳的制备 | 第30-31页 |
| ·标准蛋白的准备 | 第31页 |
| ·SDS-PAGE 法测定酶分子量 | 第31页 |
| ·酶学性质研究方法 | 第31页 |
| ·酶的最适温度及热稳定性 | 第31页 |
| ·酶的最适pH 及酸碱稳定性 | 第31页 |
| ·金属离子和其他化学物质对酶活力的影响 | 第31页 |
| ·结果与讨论 | 第31-38页 |
| ·盐析 | 第31-32页 |
| ·DEAE-Sepharose FF 离子交换层析 | 第32-33页 |
| ·活性聚丙烯酰胺电泳 | 第33-34页 |
| ·酶学性质 | 第34-38页 |
| ·结论 | 第38-39页 |
| 结论与展望 | 第39-40页 |
| 结论 | 第39页 |
| 展望 | 第39-40页 |
| 致谢 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-46页 |
| 附录 | 第46-50页 |
| 攻读硕士学位期间成果 | 第50页 |
