| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-28页 |
| 1.1 果胶的概述 | 第14-15页 |
| 1.1.1 果胶的结构 | 第14-15页 |
| 1.1.2 果胶的分类 | 第15页 |
| 1.2 改性果胶及其研究概况 | 第15-22页 |
| 1.2.0 改性果胶的结构 | 第15-18页 |
| 1.2.0.1 链取代 | 第16页 |
| 1.2.0.2 链延长 | 第16-17页 |
| 1.2.0.3 链降解 | 第17-18页 |
| 1.2.1 改性果胶的功能特性 | 第18-19页 |
| 1.2.2 改性果胶的凝胶性质 | 第19-20页 |
| 1.2.3 改性果胶的制备方法 | 第20-22页 |
| 1.2.3.1 化学改性 | 第20-21页 |
| 1.2.3.2 物理改性 | 第21-22页 |
| 1.2.3.3 酶法改性 | 第22页 |
| 1.3 光化学氧化技术概况 | 第22-26页 |
| 1.3.1 光化学氧化 | 第22-23页 |
| 1.3.2 紫外光在光化学氧化中的应用 | 第23-26页 |
| 1.3.2.1 UV/O_3法 | 第23-24页 |
| 1.3.2.2 UV/TiO_2法 | 第24页 |
| 1.3.2.3 UV/H_2O_2法 | 第24-26页 |
| 1.4 本课题的立题意义及研究内容 | 第26-28页 |
| 1.4.1 立题背景及意义 | 第26页 |
| 1.4.2 主要内容 | 第26-28页 |
| 第二章 紫外光催化过氧化氢氧化反应对柑橘果胶的结构修饰与机理研究 | 第28-54页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第28-30页 |
| 2.1.1 主要仪器与设备 | 第28-29页 |
| 2.1.2 主要材料与试剂 | 第29-30页 |
| 2.2 实验装置 | 第30-31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-36页 |
| 2.3.1 过氧化氢氧化反应(H_2O_2)制备改性柑橘果胶 | 第31页 |
| 2.3.2 Fenton氧化反应制备改性柑橘果胶 | 第31页 |
| 2.3.3 紫外光辐射法(UV)制备改性柑橘果胶 | 第31页 |
| 2.3.4 紫外光催化过氧化氢氧化反应(UV+H_2O_2)制备改性柑橘果胶 | 第31-32页 |
| 2.3.5 紫外光催化过氧化氢氧化氧化反应制备改性柑橘果胶的工艺探索 | 第32-33页 |
| 2.3.5.1 柑橘果胶原料的超声预处理 | 第32页 |
| 2.3.5.2 UV+H_2O_2反应终止条件的探索 | 第32页 |
| 2.3.5.3 改性柑橘果胶产物的回收 | 第32页 |
| 2.3.5.4 改性柑橘果胶产物的干燥 | 第32-33页 |
| 2.3.6 紫外光催化过氧化氢氧化反应制备改性柑橘果胶的单因素实验 | 第33页 |
| 2.3.7 相对粘度测定 | 第33页 |
| 2.3.8 粒径及其分布测定 | 第33-34页 |
| 2.3.9 分子量测定 | 第34页 |
| 2.3.10 还原糖含量测定 | 第34-35页 |
| 2.3.11 双键含量的测定 | 第35页 |
| 2.3.12 自由基检测 | 第35-36页 |
| 2.4 结果与分析 | 第36-53页 |
| 2.4.1 改性柑橘果胶制备方法的选择 | 第36-37页 |
| 2.4.2 UV+H_2O_2制备改性柑橘果胶工艺的探索 | 第37-41页 |
| 2.4.2.1 超声预处理对UV+H_2O_2制备改性柑橘果胶过程的影响 | 第37-39页 |
| 2.4.2.2 UV+H_2O_2制备改性柑橘果胶的反应终止条件探索 | 第39-40页 |
| 2.4.2.3 UV+H_2O_2制备改性柑橘果胶的产物分离条件探索 | 第40页 |
| 2.4.2.4 UV+H_2O_2制备改性柑橘果胶的干燥条件探索 | 第40-41页 |
| 2.4.3 UV+H_2O_2制备改性柑橘果胶工艺路线的确定 | 第41-42页 |
| 2.4.4 UV+H_2O_2制备改性柑橘果胶工艺的影响因素 | 第42-53页 |
| 2.4.4.1 柑橘果胶浓度的影响 | 第42-44页 |
| 2.4.4.2 H_2O_2加入量的影响 | 第44-46页 |
| 2.4.4.3 溶液pH值的影响 | 第46-48页 |
| 2.4.4.4 反应时间的影响 | 第48-53页 |
| 2.5 本章小结 | 第53-54页 |
| 第三章 紫外光催化过氧化氢氧化修饰对柑橘果胶结构与溶液性质的影响 | 第54-81页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第54-56页 |
| 3.1.1 主要仪器与设备 | 第54-55页 |
| 3.1.2 主要材料与试剂 | 第55-56页 |
| 3.2 实验方法 | 第56-63页 |
| 3.2.1 紫外光催化过氧化氢氧化反应制备MCP实验原料 | 第56-57页 |
| 3.2.1.1 酸性条件下制备的MCP | 第56-57页 |
| 3.2.1.2 碱性条件制备的MCP | 第57页 |
| 3.2.2 总糖含量的测定 | 第57-58页 |
| 3.2.3 糖醛酸含量测定 | 第58-59页 |
| 3.2.4 还原糖含量分析 | 第59-60页 |
| 3.2.5 酯化度分析 | 第60页 |
| 3.2.6 分子量测定 | 第60页 |
| 3.2.7 FT-IR测试 | 第60页 |
| 3.2.8 单糖分析 | 第60页 |
| 3.2.9 核磁共振NMR测定 | 第60-61页 |
| 3.2.10 特性粘度分析 | 第61页 |
| 3.2.11 凝胶制备 | 第61-62页 |
| 3.2.12 改性柑橘果胶溶液的静态流变性测定 | 第62页 |
| 3.2.13 改性柑橘果胶溶液的动态流变测试 | 第62-63页 |
| 3.3 结果与分析 | 第63-80页 |
| 3.3.1 酸性和碱性条件下改性柑橘果胶的结构表征 | 第63-71页 |
| 3.3.1.1 分子量及其分布 | 第63-64页 |
| 3.3.1.2 半乳糖醛酸含量分析 | 第64-65页 |
| 3.3.1.3 总糖含量分析 | 第65-66页 |
| 3.3.1.4 还原糖含量分析 | 第66页 |
| 3.3.1.5 酯化度 | 第66-67页 |
| 3.3.1.6 红外光谱分析(FT-IR) | 第67-69页 |
| 3.3.1.7 单糖分析 | 第69-70页 |
| 3.3.1.8 NMR分析 | 第70-71页 |
| 3.3.2 果胶溶液的特性粘度分析 | 第71-73页 |
| 3.3.3 紫外光催化过氧化氢氧化改性对柑橘果胶流变特性的影响 | 第73-74页 |
| 3.3.4 紫外光催化过氧化氢氧化改性对柑橘果胶凝胶性质的影响 | 第74-75页 |
| 3.3.5 紫外光催化过氧化氢氧化改性对柑橘果胶流变特性的影响 | 第75-80页 |
| 3.3.5.1 柑橘果胶原料的流变特性 | 第75-76页 |
| 3.3.5.2 Ca~(2+)对MCP_pH4流变特性的影响 | 第76-77页 |
| 3.3.5.3 蔗糖对MCP_pH4的凝胶性质的影响 | 第77-79页 |
| 3.3.5.4 Ca~(2+)对MCP_pH12的凝胶性质的影响 | 第79-80页 |
| 3.4 本章小结 | 第80-81页 |
| 第四章 低分子量改性柑橘果胶的制备 | 第81-99页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第81-83页 |
| 4.1.1 主要仪器与设备 | 第81-82页 |
| 4.1.2 主要材料与试剂 | 第82-83页 |
| 4.2 实验方法 | 第83-86页 |
| 4.2.0 果胶酶活力的测定 | 第83页 |
| 4.2.1 高H_2O_2浓度下UV+H_2O_2一步法制备低分子量改性柑橘果胶 | 第83-84页 |
| 4.2.2 UV+H_2O_2两步法制备低分子量改性柑橘果胶 | 第84页 |
| 4.2.3 酶法制备低分子量改性柑橘果胶 | 第84页 |
| 4.2.4 UV+H_2O_2与酶联合法制备低分子量改性柑橘果胶 | 第84-85页 |
| 4.2.5 UV+H_2O_2与酶联合法制备低分子量改性柑橘果胶的影响因素分析 | 第85-86页 |
| 4.2.5.1 pH值的影响 | 第85页 |
| 4.2.5.2 温度的影响 | 第85页 |
| 4.2.5.3 添酶量的影响 | 第85页 |
| 4.2.5.4 反应时间的影响 | 第85-86页 |
| 4.2.6 相对粘度测定 | 第86页 |
| 4.2.7 还原糖含量的测定 | 第86页 |
| 4.2.8 分子量的测定 | 第86页 |
| 4.2.9 扫描电镜 | 第86页 |
| 4.3 结果与分析 | 第86-97页 |
| 4.3.1 高H_2O_2浓度下UV+H_2O_2一步法制备低分子量改性柑橘果胶 | 第86-87页 |
| 4.3.2 二步UV+H_2O_2法制备低分子量改性柑橘果胶 | 第87-89页 |
| 4.3.3 酶法制备低分子量改性果胶 | 第89-90页 |
| 4.3.4 光催化过氧化氢氧化反应与酶联合制备低分子量改性柑橘果胶 | 第90-96页 |
| 4.3.4.1 溶液pH的影响 | 第90-91页 |
| 4.3.4.2 温度的影响 | 第91-93页 |
| 4.3.4.3 果胶酶添加量的影响 | 第93-94页 |
| 4.3.4.4 酶解时间的影响 | 第94-96页 |
| 4.3.5 UV+H_2O_2与酶联合制备的LMW-MCP的微观结构 | 第96-97页 |
| 4.4 本章小结 | 第97-99页 |
| 第五章 改性柑橘果胶的纯化及其与凝集素结合能力初探 | 第99-110页 |
| 5.1 实验材料与仪器 | 第99-100页 |
| 5.1.1 主要仪器与设备 | 第99-100页 |
| 5.1.2 主要材料与试剂 | 第100页 |
| 5.2 实验方法 | 第100-102页 |
| 5.2.1 用于纯化的MCP的制备 | 第100-101页 |
| 5.2.2 葡聚糖凝胶柱层析纯化MCP | 第101页 |
| 5.2.3 纯化后MCP的分子量测试 | 第101页 |
| 5.2.4 凝血实验的原理和操作 | 第101-102页 |
| 5.2.5 蓖麻凝集素浓度的选择 | 第102页 |
| 5.2.6 MCP对蓖麻凝集反应的影响 | 第102页 |
| 5.3 结果与分析 | 第102-109页 |
| 5.3.1 MCP的纯化 | 第102-106页 |
| 5.3.2 凝血实验结果 | 第106-109页 |
| 5.3.2.1 蓖麻凝集素的最佳浓度选择 | 第106-107页 |
| 5.3.2.2 MCP对凝集反应的影响 | 第107-109页 |
| 5.4 本章小结 | 第109-110页 |
| 总结与展望 | 第110-113页 |
| 参考文献 | 第113-125页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第125-126页 |
| 致谢 | 第126-127页 |
| 附件 | 第127页 |
