| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-30页 |
| 1.1 引言 | 第14页 |
| 1.2 桑葚概况 | 第14-17页 |
| 1.2.1 桑葚基本情况 | 第14-16页 |
| 1.2.2 桑葚开发利用现状 | 第16-17页 |
| 1.3 酚类化合物及其提取与分离纯化 | 第17-19页 |
| 1.3.1 酚类化合物分类及特征结构式 | 第17-18页 |
| 1.3.2 酚类化合物的提取分离 | 第18-19页 |
| 1.3.3 酚类组分的分离纯化 | 第19页 |
| 1.4 桑葚酚类化合物及其生物活性 | 第19-22页 |
| 1.4.1 常见桑葚酚类化合物 | 第19-20页 |
| 1.4.2 桑葚酚类化合物生物活性及其研究现状 | 第20-22页 |
| 1.5 肠道微生物与机体健康 | 第22-26页 |
| 1.5.1 肠道微生物与免疫发育及免疫调节 | 第22-23页 |
| 1.5.2 肠道微生物与肠炎 | 第23-24页 |
| 1.5.3 肠道微生物与代谢综合症 | 第24页 |
| 1.5.4 肠道微生物与其他疾病 | 第24-26页 |
| 1.6 糖尿病治疗机制 | 第26-27页 |
| 1.6.1 降低氧化应激、提高抗氧化活性 | 第26页 |
| 1.6.2 抑制葡萄糖吸收 | 第26页 |
| 1.6.3 改善胰岛 β 细胞功能和组织胰岛素抵抗 | 第26-27页 |
| 1.7 本课题选题依据和研究内容 | 第27-30页 |
| 1.7.1 选题依据 | 第27页 |
| 1.7.2 研究目标 | 第27-28页 |
| 1.7.3 研究内容 | 第28页 |
| 1.7.4 拟采取的研究方法和技术路线 | 第28-30页 |
| 第二章 机械破碎方式对桑葚酚类化合物提取的影响 | 第30-44页 |
| 2.1 前言 | 第30页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第30-31页 |
| 2.2.1 原料与试剂 | 第30-31页 |
| 2.2.2 主要仪器与设备 | 第31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.3.1 胶体磨与榨汁机破碎 | 第31-32页 |
| 2.3.2 果渣酚类化合物的提取 | 第32页 |
| 2.3.3 桑葚鲜果理化性质分析 | 第32页 |
| 2.3.4 粒径检测 | 第32-33页 |
| 2.3.5 微观结构检测 | 第33页 |
| 2.3.6 分光光度计法检测总酚含量 | 第33页 |
| 2.3.7 分光光度计法检测总花青素含量 | 第33页 |
| 2.3.8 氧自由基吸收能力试验 | 第33页 |
| 2.3.9 α-葡萄糖苷酶抑制率检测 | 第33-34页 |
| 2.3.10 HPLC-PAD分析 | 第34页 |
| 2.3.11 统计分析方法 | 第34页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第34-43页 |
| 2.4.1 桑葚基本理化性质及其果汁酚含量分析 | 第34-35页 |
| 2.4.2 桑葚渣酚类化合物提取曲线 | 第35-37页 |
| 2.4.3 果汁和果渣中酚类组分的定性定量分析 | 第37-40页 |
| 2.4.4 桑葚汁和果渣提取物的生物活性分析 | 第40页 |
| 2.4.5 果渣微观结构 | 第40-43页 |
| 2.5 本章小结 | 第43-44页 |
| 第三章 溶剂极性效应对桑葚酚类化合物提取的影响 | 第44-60页 |
| 3.1 引言 | 第44页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第44-45页 |
| 3.2.1 原料与试剂 | 第44-45页 |
| 3.2.2 主要仪器与设备 | 第45页 |
| 3.3 实验方法 | 第45-49页 |
| 3.3.1 提取 | 第45-46页 |
| 3.3.2 超高压液相电喷射离子化串联质谱分析 | 第46页 |
| 3.3.3 总酚、总黄酮和总花青素测定 | 第46-47页 |
| 3.3.4 抗氧化评价 | 第47-48页 |
| 3.3.5 细胞毒性和细胞增殖抑制率实验 | 第48页 |
| 3.3.6 数据统计分析 | 第48-49页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第49-59页 |
| 3.4.1 总酚、总花青素和总黄酮含量 | 第49-50页 |
| 3.4.2 酚类组分鉴定 | 第50-53页 |
| 3.4.3 酚类化合物定量 | 第53-55页 |
| 3.4.4 抗氧化活性评价 | 第55-58页 |
| 3.4.5 提取物的细胞毒性和抑制HepG2细胞增殖的能力 | 第58-59页 |
| 3.5 本章小结 | 第59-60页 |
| 第四章 桑葚酚类化合物的分级纯化、组成鉴定及主要活性组分的探索 | 第60-86页 |
| 4.1 前言 | 第60页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第60-61页 |
| 4.2.1 原料与试剂 | 第60-61页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第61页 |
| 4.3 实验方法 | 第61-64页 |
| 4.3.1 桑葚酚类化合物的提取 | 第61-62页 |
| 4.3.2 聚酰胺树脂预处理和装柱 | 第62页 |
| 4.3.3 桑葚酚类化合物的分级洗脱纯化 | 第62页 |
| 4.3.4 UHPLC-TOF-MS/MS分析 | 第62页 |
| 4.3.5 鉴定组分的量化分析 | 第62-63页 |
| 4.3.6 抗氧化活性评价 | 第63-64页 |
| 4.3.7 α-葡萄糖苷酶活性抑制能力 | 第64页 |
| 4.3.8 大鼠胰岛瘤细胞RIN-m5f细胞活力测定 | 第64页 |
| 4.3.9 大鼠胰岛瘤细胞RIN-m5f细胞毒性实验 | 第64页 |
| 4.3.10 数据分析方法 | 第64页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第64-80页 |
| 4.4.1 乙醇梯度洗脱纯化物中酚类化合物的分析 | 第64-65页 |
| 4.4.2 UHPLC-HR-ESI-TOF-MS/MS鉴定结果 | 第65-72页 |
| 4.4.3 定量分析 | 第72-73页 |
| 4.4.4 抗氧化活性评价 | 第73-74页 |
| 4.4.5 抗糖尿病的潜力 | 第74-76页 |
| 4.4.6. 主成分聚类分析 | 第76-80页 |
| 4.5 本章小结 | 第80-86页 |
| 第五章 桑葚酚类化合物消化性及对脂类消化的影响 | 第86-95页 |
| 5.1 前言 | 第86页 |
| 5.2 实验材料与仪器 | 第86-87页 |
| 5.2.1 原料与试剂 | 第86-87页 |
| 5.2.2 仪器与设备 | 第87页 |
| 5.3 实验方法 | 第87-89页 |
| 5.3.1 桑葚酚类提取的制备 | 第87页 |
| 5.3.2 体外模拟消化 | 第87-88页 |
| 5.3.3 乳化液的制备 | 第88页 |
| 5.3.4 粒径检测 | 第88页 |
| 5.3.5 粘度 | 第88页 |
| 5.3.6 游离脂肪酸含量 | 第88-89页 |
| 5.3.7 HPLC分析 | 第89页 |
| 5.3.8 统计分析 | 第89页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第89-94页 |
| 5.4.1 模拟胃肠消化对桑葚酚类化合物组成的影响 | 第89-91页 |
| 5.4.2 桑葚酚类提取物对脂类消化的影响 | 第91页 |
| 5.4.3 桑葚酚类提取物对油脂消化液流变特性(粒径和粘度)的影响 | 第91-94页 |
| 5.5 本章小结 | 第94-95页 |
| 第六章 桑葚酚类化合物降血糖活性及对DB/DB小鼠肠道菌群的影响 | 第95-128页 |
| 6.1 前言 | 第95-96页 |
| 6.2 材料与设备 | 第96-98页 |
| 6.2.1 材料与动物 | 第96页 |
| 6.2.2 主要试剂 | 第96-98页 |
| 6.3 实验方法 | 第98-103页 |
| 6.3.1 桑葚酚类化合物的提取 | 第98页 |
| 6.3.2 动物分组及实验 | 第98-99页 |
| 6.3.3 理化指标检测 | 第99-100页 |
| 6.3.4 组织石蜡包埋切片 | 第100页 |
| 6.3.5 HE染色 | 第100页 |
| 6.3.6 免疫组化实验 | 第100页 |
| 6.3.7 肠道微生物多样性检测 | 第100-103页 |
| 6.3.8 粪便短链脂肪酸检测 | 第103页 |
| 6.4 数据分析方法 | 第103-104页 |
| 6.5 结果分析 | 第104-124页 |
| 6.5.1 桑葚酚类化合物对db/db小鼠大肠菌群组成的影响 | 第104-120页 |
| 6.5.2 各组小鼠粪便短链脂肪酸的组成和含量 | 第120-121页 |
| 6.5.3 桑葚酚类提取物的降血糖活性 | 第121-124页 |
| 6.6 讨论 | 第124-127页 |
| 6.7 本章小结 | 第127-128页 |
| 结论与展望 | 第128-130页 |
| 参考文献 | 第130-151页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第151-153页 |
| 致谢 | 第153-154页 |
| 附件 | 第154页 |
