| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-22页 |
| 1.1 白花木瓜介绍 | 第14页 |
| 1.2 齐墩果酸简介 | 第14-15页 |
| 1.3 齐墩果酸的提取 | 第15-16页 |
| 1.3.1 乙醇回流提取法 | 第15-16页 |
| 1.3.2 超声波辅助提取法 | 第16页 |
| 1.3.3 微波辅助提取法 | 第16页 |
| 1.4 脉冲电场简介 | 第16-19页 |
| 1.4.1 脉冲电场的现状与发展 | 第16-17页 |
| 1.4.2 脉冲电场在有效成分提取中的应用 | 第17页 |
| 1.4.3 脉冲电场在食品杀菌中的应用 | 第17-18页 |
| 1.4.4 脉冲电场在大分子改性中的应用 | 第18-19页 |
| 1.5 低聚果糖简介 | 第19页 |
| 1.6 低聚果糖的制备 | 第19-20页 |
| 1.7 研究背景 | 第20页 |
| 1.8 本文研究内容及技术路线图 | 第20-22页 |
| 1.8.1 研究内容 | 第20-21页 |
| 1.8.2 技术路线图 | 第21-22页 |
| 第二章 乙醇回流法提取齐墩果酸 | 第22-33页 |
| 2.1 前言 | 第22页 |
| 2.2 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.2 主要设备 | 第23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.3.1 原料预处理 | 第23页 |
| 2.3.2 齐墩果酸的检测 | 第23-24页 |
| 2.3.3 提取温度对白花木瓜中齐墩果酸提取的影响 | 第24页 |
| 2.3.4 提取时间对白花木瓜中齐墩果酸提取的影响 | 第24页 |
| 2.3.5 料液比对白花木瓜中齐墩果酸提取的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.6 乙醇浓度对白花木瓜中齐墩果酸提取的影响 | 第25页 |
| 2.3.7 齐墩果酸提取率定义 | 第25页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第25-32页 |
| 2.4.1 齐墩果酸及糖源在白花木瓜中的分布 | 第25-26页 |
| 2.4.2 提取温度对白花木瓜中齐墩果酸提取的影响 | 第26-27页 |
| 2.4.3 提取时间对白花木瓜中齐墩果酸提取的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.4 料液比对白花木瓜中齐墩果酸提取的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.5 乙醇浓度对白花木瓜中齐墩果酸提取的影响 | 第29页 |
| 2.4.6 响应面优化提取齐墩果酸条件 | 第29-32页 |
| 2.5 本章小结 | 第32-33页 |
| 第三章 脉冲电场辅助提取齐墩果酸的研究 | 第33-45页 |
| 3.1 前言 | 第33页 |
| 3.2 实验材料 | 第33-34页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第33页 |
| 3.2.2 主要设备 | 第33-34页 |
| 3.3 实验方法 | 第34-37页 |
| 3.3.1 脉冲电场处理白花木瓜粉液 | 第34-35页 |
| 3.3.2 不同电场强度对白花木瓜粉液电导率的影响 | 第35页 |
| 3.3.3 不同电场强度对齐墩果酸提取率的影响 | 第35页 |
| 3.3.4 不同脉冲数对齐墩果酸提取率的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.5 不同脉冲温度对齐墩果酸提取率的影响 | 第36页 |
| 3.3.6 非脉冲电场提取与脉冲电场提取法对比 | 第36页 |
| 3.3.7 脉冲电场对齐墩果酸抗氧化性的影响 | 第36-37页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第37-44页 |
| 3.4.1 不同电场强度对白花木瓜粉液电导率的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.2 不同电场强度对提取齐墩果酸的影响 | 第38-39页 |
| 3.4.3 不同脉冲数对提取齐墩果酸的影响 | 第39-40页 |
| 3.4.4 不同提取温度对提取齐墩果酸的影响 | 第40页 |
| 3.4.5 响应面优化提取齐墩果酸条件 | 第40-43页 |
| 3.4.6 非脉冲电场提取与脉冲电场辅助提取法对比 | 第43页 |
| 3.4.7 脉冲电场作用后齐墩果酸抗氧化性变化 | 第43-44页 |
| 3.5 本章小结 | 第44-45页 |
| 第四章 全细胞化制备低聚果糖的研究 | 第45-60页 |
| 4.1 前言 | 第45页 |
| 4.2 实验材料 | 第45-47页 |
| 4.2.1 菌株 | 第45-46页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第46页 |
| 4.2.3 主要设备 | 第46-47页 |
| 4.3 实验方法 | 第47-50页 |
| 4.3.1 柠檬酸缓冲液制备 | 第47页 |
| 4.3.2 Tris盐酸缓冲液制备 | 第47页 |
| 4.3.3 培养基 | 第47页 |
| 4.3.4 菌体保护剂 | 第47页 |
| 4.3.5 A. niger 6640 全细胞生物催化剂的制备 | 第47-48页 |
| 4.3.6 高效液相色谱法测定FOS含量 | 第48页 |
| 4.3.7 全细胞生物催化剂浓度对制备FOS的影响 | 第48页 |
| 4.3.8 初始pH对全细胞制备FOS的影响 | 第48-49页 |
| 4.3.9 底物浓度对全细胞制备FOS的影响 | 第49页 |
| 4.3.10 CaCl_2浓度对全细胞制备FOS的影响 | 第49页 |
| 4.3.11 反应温度A. niger 6640 全细胞生物转化制备FOS的影响 | 第49-50页 |
| 4.3.12 反应时间对A. niger 6640 全细胞生物转化制备FOS的影响 | 第50页 |
| 4.4 果糖基转移酶（Fructosyltransferase）的纯化和鉴别 | 第50-51页 |
| 4.4.1 果糖基转移酶（Ffase）酶活定义 | 第50页 |
| 4.4.2 聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE） | 第50-51页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第51-57页 |
| 4.5.1 全细胞催化剂（Whole-Cell-Biocatalysts） | 第51-52页 |
| 4.5.2 底物浓度对于制备FOS的影响 | 第52-53页 |
| 4.5.3 CaCl_2对于制备FOS的影响 | 第53-54页 |
| 4.5.4 初始pH对制备FOS的影响 | 第54-55页 |
| 4.5.5 反应温度对制备FOS的影响 | 第55-56页 |
| 4.5.6 反应时间对制备FOS的影响 | 第56-57页 |
| 4.6 果糖基转移酶的纯化和鉴别 | 第57-59页 |
| 4.7 本章小结 | 第59-60页 |
| 第五章 低聚果糖与齐墩果酸混合制品对肠道菌生长影响 | 第60-69页 |
| 5.1 前言 | 第60页 |
| 5.2 实验材料 | 第60-61页 |
| 5.2.1 菌株 | 第60页 |
| 5.2.2 主要试剂 | 第60-61页 |
| 5.2.3 主要设备 | 第61页 |
| 5.3 实验方法 | 第61-63页 |
| 5.3.1 进风口温度对喷雾干燥效果的影响 | 第61页 |
| 5.3.2 进料温度温度对喷雾干燥效果的影响 | 第61-62页 |
| 5.3.3 进料流量对喷雾干燥效果的影响 | 第62页 |
| 5.3.4 菌体培养 | 第62页 |
| 5.3.5 FOS-OA对双歧杆菌生长的影响 | 第62页 |
| 5.3.6 FOS-OA对大肠杆菌生长的影响 | 第62页 |
| 5.3.7 吸光度测定 | 第62-63页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第63-68页 |
| 5.4.1 进风口温度的影响 | 第63页 |
| 5.4.2 进料温度的影响 | 第63-64页 |
| 5.4.3 进料流量的影响 | 第64-65页 |
| 5.4.4 FOS-OA对双歧杆菌的影响 | 第65-66页 |
| 5.4.5 FOS-OA对大肠杆菌生长影响 | 第66-67页 |
| 5.4.6 机理探讨 | 第67-68页 |
| 5.5 本章小结 | 第68-69页 |
| 结论与展望 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 附件 | 第78页 |
