| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 第一章 绪论 | 第8-16页 |
| ·葡萄酒香气 | 第8页 |
| ·β-葡萄糖苷酶研究概况 | 第8-12页 |
| ·β-葡萄糖苷酶的作用机理 | 第8-9页 |
| ·β-葡萄糖苷酶的来源 | 第9-10页 |
| ·β-葡萄糖苷酶的酶学性质 | 第10页 |
| ·β-葡萄糖苷酶的分离纯化 | 第10-11页 |
| ·β-葡萄糖苷酶对葡萄酒香气的影响 | 第11-12页 |
| ·β-葡萄糖苷酶的微生物筛选 | 第12页 |
| ·β-葡萄糖苷酶生产菌的选育 | 第12-14页 |
| ·离子注入的特点 | 第12-13页 |
| ·离子注入的生物效应 | 第13页 |
| ·离子束注入在微生物诱变育种的应用 | 第13-14页 |
| ·本论文研究的意义和内容 | 第14-16页 |
| ·论文研究的目的和意义 | 第14页 |
| ·研究内容 | 第14-15页 |
| ·技术路线 | 第15-16页 |
| 第二章 材料和方法 | 第16-22页 |
| ·实验材料 | 第16-17页 |
| ·主要仪器 | 第16页 |
| ·主要试剂 | 第16-17页 |
| ·样品采集 | 第17页 |
| ·培养基 | 第17页 |
| ·配制试剂 | 第17页 |
| ·实验方法 | 第17-22页 |
| ·产β-葡萄糖苷酶菌株的筛选 | 第17-18页 |
| ·酶活的测定 | 第18页 |
| ·菌株的分类鉴定 | 第18-19页 |
| ·对筛选出的菌株的离子束诱变 | 第19页 |
| ·葡萄结合态香气的萃取 | 第19页 |
| ·酶促水解 | 第19页 |
| ·HS-SPME条件 | 第19-20页 |
| ·GC-MS分析 | 第20页 |
| ·定性和半定量分析 | 第20页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第20页 |
| ·液态发酵产β-葡萄糖苷酶的纯化 | 第20-21页 |
| ·β-葡萄糖苷酶的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 | 第21页 |
| ·β-葡萄糖苷酶的酶学性质研究 | 第21-22页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第22-41页 |
| ·产β-葡萄糖苷酶菌株的分离筛选 | 第22-23页 |
| ·筛子及β-葡萄糖苷酶的酶活测定方法的确立 | 第22-23页 |
| ·通过比色法测酶活复筛 | 第23页 |
| ·产β-葡萄糖苷酶菌株的鉴定 | 第23-25页 |
| ·形态观察 | 第23-24页 |
| ·分子鉴定——18s rDNA分析 | 第24-25页 |
| ·筛选的β-葡萄糖苷酶的实际应用效果 | 第25-30页 |
| ·β-葡萄糖苷酶对萜类物质的影响 | 第26-28页 |
| ·β-葡萄糖苷酶对其他香气物质的影响 | 第28-30页 |
| ·对筛选出的黑曲霉菌株N~+离子束诱变 | 第30-31页 |
| ·离子注入剂量的确定 | 第30-31页 |
| ·黑曲霉高产菌株的筛选 | 第31页 |
| ·对发酵产β-葡萄糖苷酶的培养基优化研究 | 第31-34页 |
| ·碳源对β-葡萄糖苷酶酶活力的影响 | 第31-32页 |
| ·麸皮用量对β-葡萄糖苷酶酶活力的影响 | 第32页 |
| ·氮源对β-葡萄糖苷酶酶活力的影响 | 第32-33页 |
| ·接种量对β-葡萄糖苷酶酶活力的影响 | 第33-34页 |
| ·来源于黑曲霉的β-葡萄糖苷酶的分离纯化研究 | 第34-40页 |
| ·β-葡萄糖苷酶的纯化流程 | 第34页 |
| ·(NH_4)_2SO_4饱和度的选择 | 第34-35页 |
| ·离子交换层析及凝胶过滤层析分离β-葡萄糖苷酶 | 第35-36页 |
| ·β-葡萄糖苷酶的SDS-PAGE分析和分子量的确定 | 第36-37页 |
| ·β-葡萄糖苷酶的酶学性质的研究 | 第37-40页 |
| ·主要结论和展望 | 第40-41页 |
| ·主要结论 | 第40页 |
| ·展望 | 第40-41页 |
| 致谢 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-47页 |
| 附录:作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第47页 |