| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 综述 | 第12-20页 |
| 1.1 副溶血弧菌 | 第12-13页 |
| 1.1.1 副溶血弧菌的生物学特性 | 第12页 |
| 1.1.2 副溶血弧菌的污染与致病性 | 第12-13页 |
| 1.2 细菌生物膜 | 第13-16页 |
| 1.2.1 生物膜的概念及其分布 | 第13页 |
| 1.2.2 生物膜的形成及影响因素 | 第13-14页 |
| 1.2.3 生物膜对食品工业的危害 | 第14-15页 |
| 1.2.4 生物膜的控制措施 | 第15-16页 |
| 1.2.4.1 加工过程中控制生物膜形成措施 | 第15页 |
| 1.2.4.2 改变接触表面性质抑制生物膜生成 | 第15页 |
| 1.2.4.3 清洗与消毒 | 第15-16页 |
| 1.2.4.4 酶与噬菌体 | 第16页 |
| 1.3 消毒剂 | 第16-19页 |
| 1.3.1 食品工业中常用的消毒剂及杀菌机理 | 第16-17页 |
| 1.3.1.1 含氯类消毒剂 | 第16页 |
| 1.3.1.2 过氧化物类消毒剂 | 第16-17页 |
| 1.3.1.3 季铵盐类消毒剂 | 第17页 |
| 1.3.1.4 醇类消毒剂 | 第17页 |
| 1.3.1.5 其他消毒剂 | 第17页 |
| 1.3.2 细菌对消毒剂抗性的现状 | 第17-18页 |
| 1.3.3 细菌对消毒剂抗性机制 | 第18-19页 |
| 1.3.3.1 生物膜 | 第18页 |
| 1.3.3.2 通透性改变 | 第18页 |
| 1.3.3.3 外排泵 | 第18-19页 |
| 1.3.3.4 酶失活 | 第19页 |
| 1.3.3.5 其它抗性机制 | 第19页 |
| 1.4 研究的目的及意义 | 第19-20页 |
| 第二章 水产品中副溶血弧菌的分离与鉴定 | 第20-30页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第20-23页 |
| 2.1.1 实验菌株 | 第20页 |
| 2.1.2 试剂及药品 | 第20-21页 |
| 2.1.3 仪器设备 | 第21-22页 |
| 2.1.4 主要培养基 | 第22-23页 |
| 2.1.4.1 3％氯化钠碱性蛋白胨水 | 第22页 |
| 2.1.4.2 弧菌显色培养基 | 第22-23页 |
| 2.1.4.3 含3%NaCl胰蛋白胨大豆肉汤培养基(TSB) | 第23页 |
| 2.1.4.4 含3%NaCl胰蛋白胨大豆肉汤琼脂(TSA) | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.2.1 样品制备 | 第23页 |
| 2.2.2 增菌检测 | 第23页 |
| 2.2.3 纯培养 | 第23-24页 |
| 2.2.4 菌种的复苏培养 | 第24页 |
| 2.2.5 引物设计及检验 | 第24-25页 |
| 2.2.5.1 引物设计 | 第24页 |
| 2.2.5.2 引物合成 | 第24-25页 |
| 2.2.6 细菌总DNA的提取与检测 | 第25页 |
| 2.2.7 基因的检测 | 第25页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第25-29页 |
| 2.3.1 增菌检测 | 第25-26页 |
| 2.3.2 细菌总DNA的提取与检测 | 第26-27页 |
| 2.3.3 基因的检测 | 第27-29页 |
| 2.4 本章小结 | 第29-30页 |
| 第三章 副溶血弧菌生物膜的形成与条件优化 | 第30-49页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第30-31页 |
| 3.1.1 实验菌株 | 第30页 |
| 3.1.2 试剂及药品 | 第30页 |
| 3.1.3 仪器设备 | 第30页 |
| 3.1.4 培养基及溶液的配置 | 第30-31页 |
| 3.1.4.1 M9最小盐浓度培养基 | 第30-31页 |
| 3.1.4.2 APW琼脂培养基 | 第31页 |
| 3.1.4.3 1×PBS溶液配制 | 第31页 |
| 3.1.4.4 0.1%结晶紫溶液 | 第31页 |
| 3.1.4.5 33%冰醋酸溶液配制 | 第31页 |
| 3.2 实验方法 | 第31-33页 |
| 3.2.1 菌悬液的制备 | 第31页 |
| 3.2.2 生物膜的测定方法 | 第31-32页 |
| 3.2.3 环境因素对副溶血弧菌形成生物膜的影响 | 第32页 |
| 3.2.3.1 温度及培养基对生物膜形成的影响 | 第32页 |
| 3.2.3.2 NaCl浓度对生物膜形成的影响 | 第32页 |
| 3.2.3.3 pH对生物膜形成的影响 | 第32页 |
| 3.2.4 不同培养条件对副溶血弧菌泳动性的影响 | 第32-33页 |
| 3.2.4.1 不同温度对泳动性的影响 | 第32页 |
| 3.2.4.2 不同盐浓度对泳动性的影响 | 第32-33页 |
| 3.2.4.3 不同pH对泳动性的影响 | 第33页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第33-48页 |
| 3.3.1 环境因素对副溶血弧菌形成生物膜的影响 | 第33-46页 |
| 3.3.1.1 温度及培养基对生物膜形成的影响 | 第33-39页 |
| 3.3.1.2 NaCl浓度对生物膜形成的影响 | 第39-42页 |
| 3.3.1.3 pH对生物膜形成的影响 | 第42-46页 |
| 3.3.2 不同培养条件对副溶血弧菌泳动性的影响 | 第46-48页 |
| 3.3.2.1 不同温度对泳动性的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.2.2 不同盐浓度对泳动性的影响 | 第47页 |
| 3.3.2.3 不同pH对泳动性的影响 | 第47-48页 |
| 3.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 第四章 不同消毒剂对副溶血弧菌生物膜的清除率 | 第49-56页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第49-50页 |
| 4.1.1 实验菌株 | 第49页 |
| 4.1.2 试剂及药品 | 第49页 |
| 4.1.3 仪器设备 | 第49-50页 |
| 4.2 实验方法 | 第50-51页 |
| 4.2.1 消毒剂的初筛 | 第50页 |
| 4.2.2 最佳消毒剂在不同浓度不同时间对生物膜的清除率 | 第50页 |
| 4.2.3 扫描电镜观察消毒前后生物膜的变化 | 第50-51页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第51-55页 |
| 4.3.1 消毒剂的初筛 | 第51-52页 |
| 4.3.2 最佳消毒剂在不同浓度不同时间对生物膜的清除率 | 第52-54页 |
| 4.3.3 扫描电镜观察消毒前后生物膜的变化 | 第54-55页 |
| 4.4 本章小结 | 第55-56页 |
| 第五章 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 附录 | 第62页 |
