摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
第一章 绪论 | 第12-20页 |
1.1 海参简介 | 第12页 |
1.2 体腔液及血浆的研究进展 | 第12-14页 |
1.2.1 海参体腔液 | 第12-13页 |
1.2.2 蚯蚓体腔液 | 第13页 |
1.2.3 星虫体腔液 | 第13页 |
1.2.4 动物血浆 | 第13-14页 |
1.3 蛋白酶抑制剂研究进展 | 第14-15页 |
1.3.1 天然来源蛋白酶抑制剂 | 第14页 |
1.3.2 人工合成的蛋白酶抑制剂 | 第14-15页 |
1.3.3 蛋白酶抑制剂应用研究 | 第15页 |
1.4 卵黄蛋白及活性肽的研究进展 | 第15-18页 |
1.4.1 卵黄蛋白研究现状 | 第15-16页 |
1.4.2 Insilico方法的应用现状 | 第16-17页 |
1.4.3 合成肽抗氧化特性的研究-化学法 | 第17页 |
1.4.4 合成肽抗氧化特性的研究-细胞水平方法 | 第17-18页 |
1.5 课题研究的内容及意义 | 第18-20页 |
1.5.1 课题研究的内容 | 第18-19页 |
1.5.2 课题研究的意义 | 第19-20页 |
第二章 海参体腔液对水产蛋白降解的抑制作用研究 | 第20-49页 |
2.1 实验材料 | 第20-22页 |
2.1.1 实验原料 | 第20页 |
2.1.2 主要实验仪器 | 第20-21页 |
2.1.3 主要实验试剂 | 第21-22页 |
2.2 实验方法 | 第22-30页 |
2.2.1 主要试剂配制 | 第22-24页 |
2.2.2 原料预处理 | 第24-25页 |
2.2.3 海参体腔液主要成分的测定 | 第25-26页 |
2.2.4 SDS-PAGE电泳分析 | 第26-27页 |
2.2.5 TCA可溶性寡肽含量测定 | 第27-28页 |
2.2.6 大菱鲆鱼鱼糜蛋白质降解最佳条件的确定 | 第28-29页 |
2.2.7 南美白对虾虾糜蛋白质降解最佳条件的确定 | 第29页 |
2.2.8 蛋白质降解抑制实验 | 第29-30页 |
2.2.9 数据处理及统计方法 | 第30页 |
2.3 结果与讨论 | 第30-49页 |
2.3.1 新鲜海参体腔液及其冻干粉主要化学成分的确定 | 第30页 |
2.3.2 大菱鲆鱼鱼糜蛋白分布的确定 | 第30-31页 |
2.3.3 不同pH条件下大菱鲆鱼鱼糜蛋白质的降解 | 第31-32页 |
2.3.4 不同温度条件下大菱鲆鱼鱼糜蛋白质的降解 | 第32-33页 |
2.3.5 不同孵育时间下大菱鲆鱼鱼糜蛋白质的降解 | 第33-35页 |
2.3.6 南美白对虾虾糜蛋白分布的确定 | 第35-36页 |
2.3.7 不同pH条件下南美白对虾虾糜蛋白质的降解 | 第36页 |
2.3.8 不同温度条件下南美白对虾虾糜蛋白质的降解 | 第36-37页 |
2.3.9 不同孵育时间下南美白对虾虾糜蛋白质的降解 | 第37-39页 |
2.3.10 体腔液对海参肌肉层蛋白质降解的抑制作用 | 第39-40页 |
2.3.11 体腔液对大菱鲆鱼鱼糜蛋白质降解的抑制作用 | 第40-42页 |
2.3.12 体腔液对南美白对虾虾糜蛋白质降解的抑制作用 | 第42-43页 |
2.3.13 海参体腔液冻干粉对海参肌肉层蛋白质降解的抑制作用 | 第43-45页 |
2.3.14 海参体腔液冻干粉对南美白对虾虾糜蛋白质降解的抑制作用 | 第45-46页 |
2.3.15 海参体腔液冻干粉对大菱鲆鱼鱼糜蛋白质降解影响作用 | 第46-49页 |
第三章 海参体腔液冻干粉对海参肌肉层蛋白质降解的抑制作用研究 | 第49-61页 |
3.1 实验材料 | 第49-51页 |
3.1.1 实验原料 | 第49页 |
3.1.2 主要实验仪器 | 第49-50页 |
3.1.3 主要实验试剂 | 第50-51页 |
3.2 实验方法 | 第51-54页 |
3.2.1 主要试剂的配制 | 第51-52页 |
3.2.2 酶抑制实验 | 第52-53页 |
3.2.3 加热处理对海参体腔液冻干粉抑制作用影响研究 | 第53页 |
3.2.4 金属离子对海参体腔液冻干粉抑制作用影响研究 | 第53页 |
3.2.5 酶解处理对海参体腔液冻干粉抑制作用影响研究 | 第53-54页 |
3.3 结果与讨论 | 第54-61页 |
3.3.1 海参体腔液对蛋白酶的作用影响 | 第54页 |
3.3.2 海参体腔液冻干粉对蛋白酶的作用影响 | 第54-55页 |
3.3.3 海参体腔液抑制能力的稳定性 | 第55-57页 |
3.3.4 加热处理对海参体腔液冻干粉抑制作用影响的确定 | 第57-58页 |
3.3.5 金属离子对海参体腔液冻干粉抑制作用影响的确定 | 第58-59页 |
3.3.6 酶解处理对海参体腔液冻干粉抑制作用影响的确定 | 第59-61页 |
第四章 海参体腔液主要卵黄蛋白及其抗氧化肽的特性研究 | 第61-80页 |
4.1 实验材料 | 第61-62页 |
4.1.1 实验材料 | 第61页 |
4.1.2 主要实验仪器 | 第61-62页 |
4.1.3 主要实验试剂 | 第62页 |
4.2 实验方法 | 第62-67页 |
4.2.1 卵黄蛋白的分离与鉴定 | 第62页 |
4.2.2 主要卵黄蛋白的氨基酸组成 | 第62-63页 |
4.2.3 聚乙二醇回收蛋白质的单因素优化实验 | 第63-64页 |
4.2.4 Insilico分析筛选抗氧化活性肽 | 第64页 |
4.2.5 抗氧化活性肽体外合成 | 第64-65页 |
4.2.6 化学法探究合成肽的抗氧化活性 | 第65-66页 |
4.2.7 合成肽对H_2O_2诱导的HepG2细胞氧化应激保护作用 | 第66-67页 |
4.3 结果与讨论 | 第67-80页 |
4.3.1 海参体腔液沉淀蛋白的序列的确定 | 第67-69页 |
4.3.2 海参体腔液冻干粉蛋白质的氨基酸组成分析 | 第69页 |
4.3.3 单因素优化海参体腔液中蛋白质的回收条件 | 第69-73页 |
4.3.4 抗氧化活性多肽的筛选 | 第73-75页 |
4.3.5 合成多肽对羟基(·OH)自由基的清除效果 | 第75-76页 |
4.3.6 合成多肽对ABTS自由基的清除效果 | 第76-77页 |
4.3.7 合成多肽对细胞的氧化应激的保护效果 | 第77-80页 |
第五章 结论 | 第80-81页 |
参考文献 | 第81-90页 |
致谢 | 第90-91页 |
攻读硕士期间研究成果 | 第91页 |