| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 第1章 引言 | 第13-22页 |
| 1.1 前言 | 第13页 |
| 1.2 河蚬的研究进展 | 第13-16页 |
| 1.2.1 河蚬的简介和资源分布 | 第13-14页 |
| 1.2.2 河蚬的营养价值及药用价值 | 第14-15页 |
| 1.2.3 研究现状 | 第15-16页 |
| 1.3 天然水产调味品的开发利用价值 | 第16-17页 |
| 1.3.1 水产调味品的制备工艺 | 第16页 |
| 1.3.2 水产调味品的风味成分及营养保健作用 | 第16-17页 |
| 1.4 生物活性肽的研究概况 | 第17-19页 |
| 1.4.1 生物活性肽简介 | 第17页 |
| 1.4.2 生物活性肽的分类 | 第17-18页 |
| 1.4.3 生物活性肽的制备及纯化方式 | 第18-19页 |
| 1.5 活性多糖的研究概况 | 第19-20页 |
| 1.5.1 活性多糖简介及功能性质 | 第19-20页 |
| 1.5.2 活性多糖的制备及纯化技术 | 第20页 |
| 1.6 本课题研究主要内容及意义 | 第20-22页 |
| 1.6.1 本课题研究的主要内容 | 第20-21页 |
| 1.6.2 本课题研究意义 | 第21-22页 |
| 第2章 河蚬精的提取工艺及其抗氧化性质 | 第22-39页 |
| 2.1 材料与方法 | 第22-26页 |
| 2.1.1 材料与设备 | 第22-23页 |
| 2.1.2 方法 | 第23-26页 |
| 2.2 结果与分析 | 第26-37页 |
| 2.2.1 河蚬肉基础成分 | 第26页 |
| 2.2.2 超声波辅助提取河蚬精单因素试验结果 | 第26-29页 |
| 2.2.3 超声波提取河蚬精的响应面试验 | 第29-35页 |
| 2.2.4 河蚬精中基础成分含量 | 第35页 |
| 2.2.5 河蚬水溶性蛋白提取液抗氧化活性 | 第35-37页 |
| 2.3 本章小结 | 第37-39页 |
| 第3章 河蚬多肽的制备 | 第39-56页 |
| 3.1 材料与设备 | 第39-40页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第39-40页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40-45页 |
| 3.2.1 水解度的测定 | 第40页 |
| 3.2.2 酶的选择 | 第40-41页 |
| 3.2.3 河蚬蛋白酶解条件的选择 | 第41-42页 |
| 3.2.4 正交试验设计 | 第42页 |
| 3.2.5 河蚬多肽的制备 | 第42页 |
| 3.2.6 大孔吸附树脂的预处理 | 第42页 |
| 3.2.7 大孔吸附树脂的选择 | 第42-43页 |
| 3.2.8 大孔吸附树脂DA201-C的静态吸附 | 第43-44页 |
| 3.2.9 大孔吸附树脂DA201-C的动态吸附和解析试验 | 第44页 |
| 3.2.10 紫外扫描 | 第44-45页 |
| 3.3 结果与分析 | 第45-55页 |
| 3.3.1 不同蛋白酶对河蚬蛋白水解度的影响 | 第45页 |
| 3.3.2 碱性蛋白酶对河蚬蛋白水解的单因素结果 | 第45-49页 |
| 3.3.3 碱性蛋白酶Alcalase对河蚬蛋白水解的正交试验 | 第49-50页 |
| 3.3.4 大孔吸附树脂分离河蚬多肽 | 第50-51页 |
| 3.3.5 大孔吸附树脂DA201-C的静态吸附与解析实验 | 第51-52页 |
| 3.3.6 大孔吸附树脂DA201-C的动态吸附和动态解析 | 第52-54页 |
| 3.3.7 河蚬多肽吸附前后的紫外扫描图谱 | 第54-55页 |
| 3.4 本章小结 | 第55-56页 |
| 第4章 河蚬多肽的理化特性及抗氧化性质的研究 | 第56-68页 |
| 4.1 材料与设备 | 第56-57页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第56-57页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第57页 |
| 4.2 方法 | 第57-60页 |
| 4.2.1 河蚬多肽的制备 | 第57页 |
| 4.2.2 河蚬多肽中基础成分的测定 | 第57页 |
| 4.2.3 河蚬多肽理化性质的测定 | 第57-59页 |
| 4.2.4 河蚬多肽相对分子量分布的测定 | 第59页 |
| 4.2.5 河蚬多肽的营养评价 | 第59页 |
| 4.2.6 河蚬多肽的抗氧化性质 | 第59页 |
| 4.2.7 数据处理 | 第59-60页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第60-67页 |
| 4.3.1 河蚬多肽的基础成分 | 第60页 |
| 4.3.2 河蚬多肽理化性质 | 第60-64页 |
| 4.3.3 河蚬多肽的营养评价 | 第64-65页 |
| 4.3.4 河蚬多肽的抗氧化性质 | 第65-67页 |
| 4.4 本章小结 | 第67-68页 |
| 第5章 河蚬多糖的分离纯化及其功能性质 | 第68-83页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第68-69页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第68-69页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第69页 |
| 5.2 实验方法 | 第69-72页 |
| 5.2.1 河蚬多糖的分离纯化 | 第69-70页 |
| 5.2.2 河蚬多糖的紫外扫描图谱 | 第70页 |
| 5.2.3 河蚬多糖的红外扫描图谱 | 第70页 |
| 5.2.4 河蚬多糖分子量的测定以及纯度的鉴定 | 第70-71页 |
| 5.2.5 河蚬多糖的抗肿瘤活性研究 | 第71-72页 |
| 5.2.6 河蚬多糖的抗氧化活性研究 | 第72页 |
| 5.3 结果与分析 | 第72-82页 |
| 5.3.1 河蚬多糖的分离及纯化 | 第72-74页 |
| 5.3.2 河蚬多糖的紫外扫描图谱分析 | 第74-75页 |
| 5.3.3 河蚬多糖的红外扫描图谱 | 第75-76页 |
| 5.3.4 河蚬多糖分子量的测定以及纯度的鉴定 | 第76-78页 |
| 5.3.5 河蚬多糖的体外抗肿瘤活性分析 | 第78-79页 |
| 5.3.6 河蚬多糖的体外抗氧化活性分析 | 第79-82页 |
| 5.4 本章小结 | 第82-83页 |
| 第6章 结论与展望 | 第83-86页 |
| 6.1 结论 | 第83-85页 |
| 6.2 进一步工作的方向 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-95页 |
| 攻读学位期间的研究成果及所获荣誉 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96页 |
