| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第10-17页 |
| 1.1 茶多酚 | 第10页 |
| 1.1.1 茶多酚组成 | 第10页 |
| 1.1.2 茶多酚性质 | 第10页 |
| 1.1.3 茶多酚生理活性 | 第10页 |
| 1.2 乳蛋白 | 第10-11页 |
| 1.3 蛋白质与多酚相互作用研究进展 | 第11-14页 |
| 1.3.1 作用机理 | 第11页 |
| 1.3.2 影响因素 | 第11-12页 |
| 1.3.2.1 蛋白质及多酚的结构 | 第11-12页 |
| 1.3.2.2 蛋白质与多酚的浓度比 | 第12页 |
| 1.3.2.3 温度 | 第12页 |
| 1.3.2.4 pH值 | 第12页 |
| 1.3.3 研究方法 | 第12-14页 |
| 1.4 多酚生物可及性的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.4.1 影响因素 | 第14页 |
| 1.4.1.1 温度 | 第14页 |
| 1.4.1.2 配料 | 第14页 |
| 1.4.2 提高方法 | 第14-15页 |
| 1.4.2.1 微胶囊化 | 第14页 |
| 1.4.2.2 添加食品添加剂 | 第14-15页 |
| 1.4.2.3 适宜处理条件 | 第15页 |
| 1.5 立题背景与意义 | 第15页 |
| 1.6 主要研究内容 | 第15-17页 |
| 2 实验材料与方法 | 第17-20页 |
| 2.1 主要材料与试剂 | 第17页 |
| 2.2 主要仪器与设备 | 第17页 |
| 2.3 实验方法 | 第17-20页 |
| 2.3.1 溶液配制 | 第17页 |
| 2.3.2 热处理过程 | 第17页 |
| 2.3.3 荧光猝灭光谱法 | 第17-18页 |
| 2.3.4 同步荧光光谱法 | 第18页 |
| 2.3.5 圆二色谱法 | 第18页 |
| 2.3.6 制备模拟体系 | 第18页 |
| 2.3.7 体外模拟消化 | 第18页 |
| 2.3.8 茶多酚的液相分析 | 第18-19页 |
| 2.3.9 生物可及性计算方法 | 第19页 |
| 2.3.10 数据统计分析 | 第19-20页 |
| 3 结果与讨论 | 第20-51页 |
| 3.1 热处理对牛乳蛋白与茶多酚相互作用的影响 | 第20-40页 |
| 3.1.1 乳球蛋白与茶多酚相互作用 | 第20-31页 |
| 3.1.1.1 荧光猝灭光谱 | 第20-21页 |
| 3.1.1.2 荧光猝灭机理的判断 | 第21-24页 |
| 3.1.1.3 结合常数与结合位点数的计算 | 第24-26页 |
| 3.1.1.4 热力学常数及结合力类型 | 第26-29页 |
| 3.1.1.5 同步荧光光谱 | 第29页 |
| 3.1.1.6 圆二色谱（CD） | 第29-31页 |
| 3.1.2 酪蛋白与茶多酚相互作用 | 第31-40页 |
| 3.1.2.1 荧光猝灭光谱 | 第31-32页 |
| 3.1.2.2 荧光猝灭机理的判断 | 第32-35页 |
| 3.1.2.3 结合常数与结合位点数的计算 | 第35-38页 |
| 3.1.2.4 热力学常数及结合力类型 | 第38页 |
| 3.1.2.5 同步荧光光谱 | 第38-39页 |
| 3.1.2.6 圆二色谱（CD） | 第39-40页 |
| 3.2 热处理对不同体系中茶多酚生物可及性的影响 | 第40-51页 |
| 3.2.1 热处理对茶多酚生物可及性的影响 | 第40-41页 |
| 3.2.2 热处理对乳清蛋白体系中茶多酚生物可及性的影响 | 第41-47页 |
| 3.2.2.1 对EGCG生物可及性的影响 | 第41-43页 |
| 3.2.2.2 对EGC生物可及性的影响 | 第43-44页 |
| 3.2.2.3 对ECG生物可及性的影响 | 第44-45页 |
| 3.2.2.4 对EC生物可及性的影响 | 第45-47页 |
| 3.2.3 热处理对酪蛋白体系中茶多酚生物可及性的影响 | 第47-51页 |
| 3.2.3.1 对EGCG生物可及性的影响 | 第47-48页 |
| 3.2.3.2 对EGC生物可及性的影响 | 第48-49页 |
| 3.2.3.3 对ECG生物可及性的影响 | 第49页 |
| 3.2.3.4 对EC生物可及性的影响 | 第49-51页 |
| 主要结论与展望 | 第51-53页 |
| 主要结论 | 第51页 |
| 展望 | 第51-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-61页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第61页 |