| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第11-25页 |
| 1.1 天麻 | 第11-13页 |
| 1.1.1 天麻概述 | 第11页 |
| 1.1.2 天麻生物学特性 | 第11页 |
| 1.1.3 天麻主要活性成分 | 第11-13页 |
| 1.1.3.1 天麻素 | 第11-12页 |
| 1.1.3.2 对羟基苯甲醇 | 第12页 |
| 1.1.3.3 对羟基苯甲醛 | 第12-13页 |
| 1.2 灰树花 | 第13-15页 |
| 1.2.1 灰树花概述 | 第13页 |
| 1.2.2 灰树花的分布及形态特征 | 第13-14页 |
| 1.2.3 灰树花生理特性 | 第14页 |
| 1.2.4 灰树花营养成分及药用价值 | 第14-15页 |
| 1.3 灰树花多糖 | 第15-19页 |
| 1.3.1 灰树花多糖概述 | 第15页 |
| 1.3.2 灰树花多糖生物活性 | 第15-17页 |
| 1.3.2.1 抗肿瘤作用 | 第16页 |
| 1.3.2.2 抗艾滋病作用 | 第16页 |
| 1.3.2.3 抗氧化和清除自由基作用 | 第16页 |
| 1.3.2.4 调节机体免疫活性作用 | 第16-17页 |
| 1.3.2.5 其他生物活性 | 第17页 |
| 1.3.3 灰树花胞外多糖合成途径及其相关酶 | 第17-19页 |
| 1.4 微生物胞外多糖的增产发酵调控 | 第19-21页 |
| 1.5 课题研究背景及意义 | 第21-23页 |
| 1.6 课题主要研究内容 | 第23-25页 |
| 第二章 天麻提取物对灰树花菌体生长和胞外多糖合成的影响 | 第25-36页 |
| 2.1 引言 | 第25页 |
| 2.2 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.2.1 天麻 | 第25页 |
| 2.2.2 灰树花菌种 | 第25页 |
| 2.2.3 实验仪器与设备 | 第25-26页 |
| 2.2.4 实验药品 | 第26-27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-29页 |
| 2.3.1 培养基 | 第27页 |
| 2.3.1.1 斜面培养基（PDA培养基） | 第27页 |
| 2.3.1.2 液体种子培养基 | 第27页 |
| 2.3.1.3 发酵培养基 | 第27页 |
| 2.3.2 培养方法 | 第27页 |
| 2.3.2.1 斜面种子培养 | 第27页 |
| 2.3.2.2 液体种子培养 | 第27页 |
| 2.3.2.3 发酵培养 | 第27页 |
| 2.3.3 天麻提取物的制备 | 第27-28页 |
| 2.3.4 分析方法 | 第28-29页 |
| 2.3.4.1 生物量的测定 | 第28页 |
| 2.3.4.2 胞外多糖产量测定 | 第28-29页 |
| 2.3.5 统计方法 | 第29页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第29-34页 |
| 2.4.0 两株灰树花菌体生物量和胞外多糖产量比较 | 第29-30页 |
| 2.4.1 天麻粉对灰树花菌体生长和胞外多糖合成的影响 | 第30页 |
| 2.4.2 天麻水提取物对灰树花菌体生长和胞外多糖合成的影响 | 第30-31页 |
| 2.4.3 天麻醇提取物对灰树花菌体生长和胞外多糖合成的影响 | 第31-32页 |
| 2.4.4 三种天麻处理方式下灰树花生物量和胞外多糖产量比较 | 第32-33页 |
| 2.4.5 三种处理方式下天麻中多糖含量比较 | 第33页 |
| 2.4.6 75%天麻醇提取物对灰树花生物量和胞外多糖产量的影响 | 第33-34页 |
| 2.5 本章小结 | 第34-36页 |
| 第三章 天麻成分的定量分析及其对灰树花菌体生长和胞外多糖合成的影响 | 第36-52页 |
| 3.1 引言 | 第36-37页 |
| 3.2 实验材料 | 第37-38页 |
| 3.2.1 天麻 | 第37页 |
| 3.2.2 灰树花菌种 | 第37页 |
| 3.2.3 实验仪器与设备 | 第37-38页 |
| 3.2.4 实验药品 | 第38页 |
| 3.3 实验方法 | 第38-43页 |
| 3.3.1 培养基 | 第38-39页 |
| 3.3.1.1 斜面培养基（PDA培养基） | 第38页 |
| 3.3.1.2 液体种子培养基 | 第38页 |
| 3.3.1.3 发酵培养基 | 第38-39页 |
| 3.3.2 培养方法 | 第39页 |
| 3.3.2.1 斜面种子培养 | 第39页 |
| 3.3.2.2 液体种子培养 | 第39页 |
| 3.3.2.3 发酵培养 | 第39页 |
| 3.3.3 天麻提取物的制备 | 第39页 |
| 3.3.4 分析方法 | 第39-43页 |
| 3.3.4.1 生物量的测定 | 第39页 |
| 3.3.4.2 胞外多糖产量测定 | 第39页 |
| 3.3.4.3 HPLC检测条件 | 第39-40页 |
| 3.3.4.4 标准曲线制作 | 第40-43页 |
| 3.3.5 统计方法 | 第43页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第43-50页 |
| 3.4.1 常温浸提天麻主要成分定量分析 | 第43-44页 |
| 3.4.2 超声波浸提天麻主要成分定量分析 | 第44-45页 |
| 3.4.3 两种提取方式的天麻主要成分含量比较 | 第45页 |
| 3.4.4 实验组生物量和胞外多糖产量比较 | 第45-46页 |
| 3.4.5 天麻素对灰树花菌体生长和胞外多糖合成的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.6 对羟基苯甲醇对灰树花菌体生长和胞外多糖合成的影响 | 第47-48页 |
| 3.4.7 对羟基苯甲醛对灰树花菌体生长和胞外多糖合成的影响 | 第48-49页 |
| 3.4.8 3种天麻成分对灰树花胞外多糖合成比较 | 第49页 |
| 3.4.9 天麻醇提取物和对羟基苯甲醛对胞外多糖合成的比较 | 第49-50页 |
| 3.5 本章小结 | 第50-52页 |
| 第四章 对羟基苯甲醛和天麻醇提取物对灰树花胞外多糖合成酶类的影响 | 第52-69页 |
| 4.1 引言 | 第52页 |
| 4.2 实验材料 | 第52-55页 |
| 4.2.1 天麻 | 第52页 |
| 4.2.2 灰树花菌种 | 第52-53页 |
| 4.2.3 实验仪器与设备 | 第53页 |
| 4.2.4 实验药品 | 第53-55页 |
| 4.3 实验方法 | 第55-58页 |
| 4.3.1 培养基 | 第55页 |
| 4.3.1.1 斜面培养基（PDA培养基） | 第55页 |
| 4.3.1.2 液体种子培养基 | 第55页 |
| 4.3.1.3 发酵培养基 | 第55页 |
| 4.3.2 培养方法 | 第55页 |
| 4.3.2.1 斜面种子培养 | 第55页 |
| 4.3.2.2 液体种子培养 | 第55页 |
| 4.3.2.3 发酵培养 | 第55页 |
| 4.3.3 天麻提取物的制备 | 第55页 |
| 4.3.4 分析方法 | 第55-58页 |
| 4.3.4.1 生物量的测定 | 第55-56页 |
| 4.3.4.2 胞外多糖产量测定 | 第56页 |
| 4.3.4.3 菌体细胞提取物制备 | 第56页 |
| 4.3.4.4 蛋白质浓度测定 | 第56-57页 |
| 4.3.4.5 酶活力测定 | 第57-58页 |
| 4.3.5 统计方法 | 第58页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第58-67页 |
| 4.4.0 生物量和胞外多糖动态变化 | 第58-60页 |
| 4.4.1 pH值和还原糖含量动态变化 | 第60-61页 |
| 4.4.2 对羟基苯甲醛吸收利用情况与生物量和胞外多糖产量间的关系 | 第61-62页 |
| 4.4.3 天麻醇提取物发酵过程中对羟基苯甲醛含量动态变化 | 第62页 |
| 4.4.4 α-磷酸葡萄糖变位酶活力动态变化 | 第62-63页 |
| 4.4.5 磷酸葡萄糖异构酶活力动态变化 | 第63-64页 |
| 4.4.6 UDP-葡萄糖焦磷酸化酶和UDP-葡萄糖脱氢酶活力动态变化 | 第64-66页 |
| 4.4.7 dTDP-葡萄糖焦磷酸化酶活力和dTDP-鼠李糖合成酶系动态变化 | 第66-67页 |
| 4.5 本章小结 | 第67-69页 |
| 第五章 总结与展望 | 第69-72页 |
| 5.1 主要结论 | 第69-70页 |
| 5.2 论文创新点 | 第70页 |
| 5.3 展望 | 第70-72页 |
| 主要参考文献 | 第72-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 附录 | 第80-82页 |
| 声明 | 第82-83页 |
