摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4-5页 |
第一章 绪论 | 第9-19页 |
1.1 低聚半乳糖 | 第9-14页 |
1.1.1 低聚半乳糖的结构 | 第9-10页 |
1.1.2 低聚半乳糖的理化性质 | 第10-11页 |
1.1.3 低聚半乳糖的生理功能 | 第11页 |
1.1.4 低聚半乳糖的制备 | 第11-13页 |
1.1.4.1 酶法合成低聚半乳糖的原理 | 第11-12页 |
1.1.4.2 β-半乳糖苷酶 | 第12-13页 |
1.1.5 低聚半乳糖的应用进展 | 第13-14页 |
1.1.5.1 低聚半乳糖在食品工业中的应用 | 第13-14页 |
1.1.5.2 低聚半乳糖在保健品及医药工业中的应用 | 第14页 |
1.2 低聚半乳糖的检测方法 | 第14-15页 |
1.3 低聚半乳糖的分离方法 | 第15-17页 |
1.3.1 离子交换树脂在低聚糖分离中的应用 | 第15-16页 |
1.3.2 硅胶在低聚糖分离中的应用 | 第16页 |
1.3.3 酶法在低聚糖分离中的应用 | 第16页 |
1.3.4 膜分离法在低聚糖分离中的应用 | 第16-17页 |
1.3.5 微生物发酵法在低聚半乳糖分离中的应用 | 第17页 |
1.4 低聚半乳糖国内外生产现状 | 第17-18页 |
1.5 本课题的研究内容 | 第18-19页 |
第二章 低聚半乳糖检测方法的建立及合成条件优化 | 第19-34页 |
2.1 材料和仪器设备 | 第19-21页 |
2.1.1 实验原料 | 第19-20页 |
2.1.2 仪器设备 | 第20-21页 |
2.2 实验方法 | 第21-23页 |
2.2.1 β-半乳糖苷酶酶活的测定 | 第21页 |
2.2.2 定性检测方法的优化 | 第21-22页 |
2.2.2.1 样品制备 | 第21页 |
2.2.2.2 展开剂的选择 | 第21-22页 |
2.2.3 高效液相色谱法流动相的优化 | 第22页 |
2.2.4 反应条件的优化 | 第22-23页 |
2.2.4.1 不同反应时间对酶法制备GOS的影响 | 第22页 |
2.2.4.2 不同pH对酶法制备GOS的影响 | 第22页 |
2.2.4.3 不同温度对酶法制备GOS的影响 | 第22-23页 |
2.2.4.4 不同底物浓度对酶法制备GOS的影响 | 第23页 |
2.2.4.5 不同加酶量对酶法制备GOS的影响 | 第23页 |
2.3 结果与讨论 | 第23-33页 |
2.3.1 β-半乳糖苷酶酶活测定结果 | 第23页 |
2.3.2 薄层层析法定性分析低聚半乳糖 | 第23-25页 |
2.3.3 高效液相色谱法定量分析低聚半乳糖 | 第25-28页 |
2.3.3.1 单个糖标准品测定 | 第25-26页 |
2.3.3.2 流动相的确定 | 第26-28页 |
2.3.4 低聚半乳糖合成条件优化 | 第28-33页 |
2.3.4.1 时间条件的影响 | 第28-29页 |
2.3.4.2 pH条件的影响 | 第29-30页 |
2.3.4.3 温度条件的影响 | 第30-31页 |
2.3.4.4 底物浓度条件的影响 | 第31-32页 |
2.3.4.5 加酶量条件的影响 | 第32-33页 |
2.4 本章小结 | 第33-34页 |
第三章 低聚半乳糖的分离纯化及结构测定 | 第34-45页 |
3.1 材料和仪器设备 | 第34-35页 |
3.1.1 实验材料 | 第34-35页 |
3.1.2 仪器设备 | 第35页 |
3.2 试验方法 | 第35-36页 |
3.2.1 分离组分LC/ESI-MS检测 | 第35页 |
3.2.2 硅胶柱分离低聚半乳糖 | 第35-36页 |
3.2.2.1 硅胶柱装柱 | 第36页 |
3.2.2.2 样品处理 | 第36页 |
3.2.2.3 分离 | 第36页 |
3.3 结果与讨论 | 第36-44页 |
3.3.1 LC-MS检测结果分析 | 第36-41页 |
3.3.1.1 高效液相色谱分离结果 | 第37-38页 |
3.3.1.2 低聚半乳糖LC/ESI-MS检测结果 | 第38-41页 |
3.3.2 低聚半乳糖硅胶柱分离结果 | 第41-44页 |
3.4 本章小结 | 第44-45页 |
第四章 结论与展望 | 第45-47页 |
4.1 结论 | 第45-46页 |
4.2 展望 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-52页 |
致谢 | 第52-53页 |
附录 | 第53页 |