| 致谢 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 缩略词表 | 第11-16页 |
| 1 绪论 | 第16-25页 |
| 1.1 桑葚概述 | 第16-17页 |
| 1.2 体外模拟消化对果蔬抗氧化活性的影响 | 第17-19页 |
| 1.3 自由基损伤与抗氧化 | 第19-21页 |
| 1.4 丙烯酰胺毒性与代谢 | 第21-24页 |
| 1.5 本课题研究目的与意义 | 第24页 |
| 1.6 本课题研究内容 | 第24-25页 |
| 2 体外模拟消化对桑葚活性成分及其抗氧化活性的影响研究 | 第25-44页 |
| 2.1 前言 | 第25页 |
| 2.2 实验材料、试剂及设备 | 第25-26页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第25-26页 |
| 2.2.3 主要设备 | 第26页 |
| 2.3 实验方法与步骤 | 第26-34页 |
| 2.4 统计分析 | 第34页 |
| 2.5 实验结果及分析 | 第34-41页 |
| 2.5.1 体外模拟消化对桑葚活性成分的影响 | 第34-36页 |
| 2.5.2 桑葚花色苷HPLC分析 | 第36-37页 |
| 2.5.3 体外抗氧化能力分析 | 第37-38页 |
| 2.5.4 桑葚对过氧化氢诱导HepG2细胞氧化损伤的抑制作用 | 第38-40页 |
| 2.5.5 相关性分析 | 第40-41页 |
| 2.6 讨论 | 第41-44页 |
| 3 体外模拟消化对桑葚抑制丙烯酰胺诱导肝脏细胞损伤的影响研究 | 第44-59页 |
| 3.1 前言 | 第44页 |
| 3.2 实验材料、试剂及设备 | 第44-45页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第44页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第44-45页 |
| 3.2.3 主要设备 | 第45页 |
| 3.3 实验方法与步骤 | 第45-48页 |
| 3.4 统计分析 | 第48页 |
| 3.5 实验结果及分析 | 第48-57页 |
| 3.5.1 丙烯酰胺对HepG2细胞活力的影响 | 第48-49页 |
| 3.5.2 桑葚样品对丙烯酰胺诱导HepG2细胞生存能力损伤的抑制作用 | 第49-50页 |
| 3.5.3 桑葚样品对HepG2细胞活性氧自由基的影响 | 第50-52页 |
| 3.5.4 桑葚样品对HepG2细胞谷胱甘肽水平的影响 | 第52-53页 |
| 3.5.5 桑葚样品对HepG2细胞线粒体功能的影响 | 第53-56页 |
| 3.5.5.1 对线粒体膜氧化损伤的影响 | 第53-55页 |
| 3.5.5.2 对线粒体膜电位的影响 | 第55-56页 |
| 3.5.6 桑葚样品对HepG2细胞核的影响 | 第56-57页 |
| 3.6 讨论 | 第57-59页 |
| 4 桑葚对肝脏细胞抗氧化酶类及Nrf2-ARE通路相关基因表达的影响 | 第59-74页 |
| 4.1 前言 | 第59页 |
| 4.2 实验材料、试剂及设备 | 第59-60页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第59页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第59页 |
| 4.2.3 主要设备 | 第59-60页 |
| 4.3 实验方法与步骤 | 第60-65页 |
| 4.4 统计分析 | 第65-66页 |
| 4.5 实验结果及分析 | 第66-70页 |
| 4.5.1 桑葚样品对HepG2细胞SOD酶活的影响 | 第66页 |
| 4.5.2 桑葚样品对HepG2细胞CAT酶活的影响 | 第66-67页 |
| 4.5.3 桑葚样品对HepG2细胞Nrf2-ARE相关基因表达的影响 | 第67-70页 |
| 4.6 讨论 | 第70-74页 |
| 5 总结与展望 | 第74-77页 |
| 5.1 总结 | 第74-75页 |
| 5.2 主要创新点 | 第75页 |
| 5.3 下一步展望 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-83页 |
| 作者简历 | 第83页 |
