| 中文摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第1章 前言 | 第9-19页 |
| 1.1 益生菌的概述 | 第9-12页 |
| 1.1.1 益生菌的定义 | 第9页 |
| 1.1.2 益生菌的保健功能特性 | 第9-10页 |
| 1.1.3 益生菌在肠道中的分布 | 第10-11页 |
| 1.1.4 益生菌的应用 | 第11页 |
| 1.1.5 益生菌在应用中存在的问题及目前研究的热点 | 第11-12页 |
| 1.2 微胶囊技术简介 | 第12-15页 |
| 1.2.1 微胶囊及微胶囊技术的定义 | 第12-13页 |
| 1.2.2 微胶囊的功能 | 第13页 |
| 1.2.3 微胶囊的壁材 | 第13页 |
| 1.2.4 微胶囊化的方法 | 第13-15页 |
| 1.3 益生菌微胶囊的研究进展 | 第15-17页 |
| 1.3.1 碳水化合物益生菌微胶囊研究进展及存在问题 | 第15-16页 |
| 1.3.2 蛋白质益生菌微胶囊研究进展及存在问题 | 第16-17页 |
| 1.4 立题依据及目的意义 | 第17-19页 |
| 1.4.1 题依据 | 第17页 |
| 1.4.2 目的意义 | 第17-19页 |
| 第2章 微胶囊制备工艺的确定 | 第19-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第19页 |
| 2.1.1 菌种 | 第19页 |
| 2.1.2 培养基 | 第19页 |
| 2.2 实验试剂 | 第19页 |
| 2.3 实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.4 方法 | 第20-24页 |
| 2.4.1 大豆分离蛋白(SPI)球蛋白含量的测定 | 第20页 |
| 2.4.2 德氏乳杆菌(LD)生长曲线的测定 | 第20-21页 |
| 2.4.3 SPI溶液在各pH值下的形态特征 | 第21页 |
| 2.4.4 LD-SPI微胶囊制备最佳工艺条件的摸索 | 第21-24页 |
| 2.4.5 SPI-CS复合微胶囊最佳工艺条件的确定 | 第24页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第24-32页 |
| 2.5.1 SPI溶液中球蛋白的含量 | 第24-25页 |
| 2.5.2 LD生长曲线的绘制 | 第25-26页 |
| 2.5.3 SPI溶液各pH值下的形态 | 第26-28页 |
| 2.5.4 SPI微胶囊最佳工艺条件的确定 | 第28-30页 |
| 2.5.5 SPI-CS复合微胶囊最佳制备条件的确定 | 第30-32页 |
| 2.6 小结 | 第32-33页 |
| 第3章 微胶囊表面结构的表征和保护效果的评价 | 第33-46页 |
| 3.1 主要试剂 | 第33页 |
| 3.2 主要仪器 | 第33页 |
| 3.3 主要试剂的配制 | 第33-34页 |
| 3.4 方法 | 第34-36页 |
| 3.4.1 扫描电镜(SEM)观察 | 第34页 |
| 3.4.2 红外光谱分析(FTIR) | 第34页 |
| 3.4.3 热重(TG)分析 | 第34页 |
| 3.4.4 微胶囊耐胃酸特性 | 第34页 |
| 3.4.5 微胶囊肠溶性 | 第34-35页 |
| 3.4.6 微胶囊耐胆盐特性 | 第35页 |
| 3.4.7 微胶囊在模拟人体消化道环境中的释放 | 第35-36页 |
| 3.5 结果分析与讨论 | 第36-45页 |
| 3.5.1 SPI微胶囊、SPI-CS复合微胶囊的SEM结果 | 第36-37页 |
| 3.5.2 傅立叶红外光谱分析(FTIR) | 第37-40页 |
| 3.5.3 热重分析 | 第40-41页 |
| 3.5.4 在模拟胃液中LD的释放情况 | 第41-42页 |
| 3.5.5 经胃液处理2h后微胶囊在显微镜下的形态变化 | 第42-43页 |
| 3.5.6 在模拟胃肠道中微胶囊保护效果的评价 | 第43-45页 |
| 3.6 本章小结 | 第45-46页 |
| 第4章 结论 | 第46-47页 |
| 第5章 本论文的主要创新点及进一步试验计划 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 攻读学位期间发表的论文及申请专利 | 第56-57页 |
