| 摘要 | 第10-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-45页 |
| 1 莲子的研究进展 | 第17-22页 |
| 2 微波、超声波及微波-超声波协同提取技术研究进展 | 第22-24页 |
| 2.1 微波辅助提取技术(MAE) | 第22页 |
| 2.2 超声波辅助提取技术(UAE) | 第22页 |
| 2.3 微波-超声波联合辅助提取技术的发展历史与研究现状 | 第22-23页 |
| 2.4 不同微波超声波提取方式对于提取目标物质活性的影响 | 第23-24页 |
| 3 低聚糖结构分析研究现状 | 第24-27页 |
| 3.1 色谱法 | 第24-25页 |
| 3.2 化学分析法 | 第25页 |
| 3.3 物理分析法 | 第25-26页 |
| 3.4 低聚糖结构信息的研究进展 | 第26-27页 |
| 4 人体肠道微生物组成 | 第27-36页 |
| 4.1 肠道菌群的研究概况 | 第27-28页 |
| 4.2 胃肠道内的粘附菌群与内容物菌群组成 | 第28-33页 |
| 4.3 影响人体肠道微生物结构的变化因素 | 第33-35页 |
| 4.4 益生元对肠道菌群的影响 | 第35-36页 |
| 5 致病菌粘附组织细胞机制 | 第36-39页 |
| 5.1 细菌菌体粘附宿主机制 | 第36-37页 |
| 5.2 低聚糖抑制致病菌粘附作用的相关进展 | 第37-38页 |
| 5.3 菌体粘附抑制剂的发展前景 | 第38-39页 |
| 6 荧光标记技术 | 第39-42页 |
| 6.1 荧光特性 | 第39页 |
| 6.2 糖类物质的荧光标记技术 | 第39-40页 |
| 6.3 FITC荧光标记糖化合物的方法 | 第40-42页 |
| 7 本论文研究内容 | 第42-43页 |
| 8 本论文的研究目的和意义 | 第43-45页 |
| 第二章 响应面法优化超声波-微波组合辅助提取莲子低聚糖工艺的研究 | 第45-64页 |
| 1 材料与仪器 | 第45-51页 |
| 1.1 试验材料 | 第45-46页 |
| 1.2 试验仪器 | 第46页 |
| 1.3 试验方法 | 第46-51页 |
| 2 结果与讨论 | 第51-63页 |
| 2.1 相关性分析 | 第51-52页 |
| 2.2 扰动因子分析 | 第52页 |
| 2.3 响应面试验结果与分析 | 第52-57页 |
| 2.4 响应面图和等高线图分析 | 第57-61页 |
| 2.5 最佳工艺参数优化 | 第61-63页 |
| 3 本章小结 | 第63-64页 |
| 第三章 莲子低聚糖的快速分离制备工艺与结构研究 | 第64-99页 |
| 1 材料与仪器 | 第64-67页 |
| 1.1 试验材料 | 第64页 |
| 1.2 试验仪器 | 第64-65页 |
| 1.3 试验方法 | 第65-67页 |
| 2 结果与分析 | 第67-97页 |
| 2.1 流速对分离效果的影响 | 第68-70页 |
| 2.2 上样浓度对分离效果的影响 | 第70-71页 |
| 2.3 梯度变换洗脱对分离效果的影响 | 第71-72页 |
| 2.4 莲子低聚糖薄层色谱分离工艺研究 | 第72-74页 |
| 2.5 莲子低聚糖各化合物纯度分析 | 第74-75页 |
| 2.6 电喷雾-飞行时间一级质谱(Q-TOF-MS)分析结果 | 第75-77页 |
| 2.7 莲子低聚糖各化合物红外光谱分析结果 | 第77-80页 |
| 2.8 莲子低聚糖各化合物单糖分析结果 | 第80-81页 |
| 2.9 电喷雾-飞行时间二级质谱(Q-TOF-MS-MS)分析结果 | 第81-83页 |
| 2.10 核磁共振分析 | 第83-84页 |
| 2.11 各化合物核磁共振图谱信号分析 | 第84-97页 |
| 3 本章小结 | 第97-99页 |
| 第四章 莲子低聚糖对小鼠肠道微生态环境调控作用研究 | 第99-128页 |
| 1 材料与方法 | 第99-109页 |
| 1.1 试验材料 | 第99-100页 |
| 1.2 试验仪器设备 | 第100-101页 |
| 1.3 试验方法 | 第101-109页 |
| 2 结果与分析 | 第109-127页 |
| 2.1 莲子低聚糖对小鼠体重的影响 | 第109页 |
| 2.2 莲子低聚糖对小鼠血常规指标的影响 | 第109-112页 |
| 2.3 DGGE电泳条带分析 | 第112-113页 |
| 2.4 细菌菌落结构的多样性和聚类分析 | 第113-114页 |
| 2.5 小鼠肠道及粪便细菌组成的主成分分析(PCA) | 第114页 |
| 2.6 DGGE凝胶条带回收序列分析结果 | 第114-118页 |
| 2.7 系统发育树的构建 | 第118-120页 |
| 2.8 莲子低聚糖对小鼠粪便中菌群数量的影响 | 第120-122页 |
| 2.9 莲子低聚糖对小鼠粪便短链脂肪酸、乳酸含量的影响 | 第122-127页 |
| 3 本章小结 | 第127-128页 |
| 第五章 莲子低聚糖各单体对益生菌体外发酵特性的研究 | 第128-144页 |
| 1 材料与方法 | 第128-131页 |
| 1.1 试验材料与菌种 | 第128-129页 |
| 1.2 试验仪器设备 | 第129页 |
| 1.3 试验菌株 | 第129页 |
| 1.4 试验培养基 | 第129-130页 |
| 1.5 试验方法 | 第130-131页 |
| 2 结果与分析 | 第131-142页 |
| 2.1 莲子低聚糖各单体对嗜酸乳杆菌生长过程及产短链脂肪酸、乳酸的影响 | 第131-132页 |
| 2.2 莲子低聚糖各单体对保加利亚乳杆菌生长过程及产短链脂肪酸、乳酸的影响 | 第132-134页 |
| 2.3 莲子低聚糖各单体对青春双歧杆菌生长过程及产短链脂肪酸、乳酸的影响 | 第134-135页 |
| 2.4 莲子低聚糖各单体对短双歧杆菌生长过程及产短链脂肪酸、乳酸的影响 | 第135-137页 |
| 2.5 莲子低聚糖各单体对婴儿双歧杆菌生长过程及产短链脂肪酸、乳酸的影响 | 第137-138页 |
| 2.6 莲子低聚糖各单体对动物双歧杆菌生长过程及产短链脂肪酸、乳酸的影响 | 第138-140页 |
| 2.7 莲子低聚糖各单体对长双歧杆菌生长过程及产短链脂肪酸、乳酸的影响 | 第140-141页 |
| 2.8 莲子低聚糖各单体对双歧双歧杆菌生长过程及产短链脂肪酸、乳酸的影响 | 第141-142页 |
| 3 本章小结 | 第142-144页 |
| 第六章 莲子低聚糖对青春双歧杆菌作用历程的研究 | 第144-155页 |
| 1 材料与方法 | 第144-146页 |
| 1.1 试验材料与菌种 | 第144-145页 |
| 1.2 试验仪器设备 | 第145页 |
| 1.3 试验方法 | 第145-146页 |
| 2 结果与分析 | 第146-153页 |
| 2.1 莲子低聚糖荧光标记产物质谱分析结果 | 第146-148页 |
| 2.2 紫外-可见吸收光谱扫描结果 | 第148页 |
| 2.3 荧光激发和发射光谱扫描结果 | 第148-150页 |
| 2.4 莲子低聚糖LOS4与青春双歧杆菌作用位点研究 | 第150-153页 |
| 3 本章小结 | 第153-155页 |
| 第七章 莲子低聚糖对抑制致病性大肠杆菌粘附Caco-2细胞能力的研究 | 第155-176页 |
| 1 材料与方法 | 第155-160页 |
| 1.1 试验材料与菌种 | 第155-156页 |
| 1.2 试验仪器设备 | 第156页 |
| 1.3 试验方法 | 第156-160页 |
| 2 结果与分析 | 第160-174页 |
| 2.1 致病性大肠杆菌荧光标记效果测定 | 第160-161页 |
| 2.2 Caco-2细胞培养分化结果 | 第161页 |
| 2.3 光学与荧光显微镜观察莲子低聚糖对致病性大肠杆菌粘附效果的影响 | 第161-163页 |
| 2.4 不同浓度莲子低聚糖各单体对致病性大肠杆菌菌体粘附力的影响 | 第163-165页 |
| 2.5 不同浓度莲子低聚糖各单体对致病性大肠杆菌菌体细胞膜流动性的影响 | 第165-166页 |
| 2.6 莲子低聚糖各单体对致病性大肠杆菌Fim H与Lrp的mRNA表达影响 | 第166-167页 |
| 2.7 激光共聚焦显微镜观察莲子低聚糖LOS4与致病性大肠杆菌的作用历程 | 第167-174页 |
| 3 本章小结 | 第174-176页 |
| 结论与展望 | 第176-179页 |
| 参考文献 | 第179-196页 |
| 致谢 | 第196-197页 |
| 附录：作者在攻读博士学位期间所取得的成果清单 | 第197-198页 |
