| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第1章 绪论 | 第9-15页 |
| 1.1 乳腺癌的研究进展 | 第9页 |
| 1.2 多酚化合物的研究进展 | 第9-13页 |
| 1.2.1 植物多酚的生物活性 | 第10-11页 |
| 1.2.2 多酚类化合物的生物活性与癌症关系的研究进展 | 第11-13页 |
| 1.3 姜黄素类化合物 | 第13页 |
| 1.4 姜黄素代谢物 | 第13-15页 |
| 第2章 论文研究的立论依据、主要内容和目的意义 | 第15-17页 |
| 2.1 立论依据 | 第15页 |
| 2.2 研究内容 | 第15-16页 |
| 2.2.1 姜科类主要成分的抗肿瘤作用 | 第15页 |
| 2.2.2 深入研究姜科类主要成分的抗肿瘤机制 | 第15页 |
| 2.2.3 CUR的代谢物THC的抗肿瘤作用 | 第15-16页 |
| 2.2.4 深入研究CUR的代谢物THC的抗肿瘤机制 | 第16页 |
| 2.3 目的意义 | 第16-17页 |
| 第3章 CUR、DMC、THC对乳腺癌MCF-7细胞抗肿瘤活性的研究 | 第17-47页 |
| 3.1 材料与方法 | 第17-18页 |
| 3.1.1 材料 | 第17页 |
| 3.1.2 试剂 | 第17页 |
| 3.1.3 实验的仪器 | 第17-18页 |
| 3.2 实验方法 | 第18-25页 |
| 3.2.1 主要试剂的配制 | 第18-21页 |
| 3.2.2 细胞复苏 | 第21页 |
| 3.2.3 细胞培养条件 | 第21-22页 |
| 3.2.4 MTT比色法测定细胞存活能力 | 第22页 |
| 3.2.5 LDH(乳酸脱氢酶)法检测细胞毒性 | 第22页 |
| 3.2.6 DAPI染色观察细胞形态 | 第22-23页 |
| 3.2.7 流式细胞仪分析细胞周期分布情况 | 第23页 |
| 3.2.8 流式细胞仪检测MCF-7细胞的凋亡情况 | 第23页 |
| 3.2.9 流式细胞仪测定MCF-7细胞活性氧(ROS)的变化情况 | 第23页 |
| 3.2.10 线粒体膜电位(△ψm)的测定 | 第23-24页 |
| 3.2.11 细胞内Caspase 3和Caspase 9的活性测定 | 第24页 |
| 3.2.12 Western Blot检测细胞凋亡蛋白的表达 | 第24-25页 |
| 3.2.13 数据的分析与处理 | 第25页 |
| 3.3 CUR、DMC对MCF-7细胞作用结果 | 第25-37页 |
| 3.3.1 细胞存活率测定结果 | 第25-27页 |
| 3.3.2 CUR、DMC对肿瘤细胞毒性的检测结果 | 第27-29页 |
| 3.3.3 CUR、DMC对MCF-7肿瘤细胞形态学变化的影响 | 第29-30页 |
| 3.3.4 细胞周期分布检测结果 | 第30-32页 |
| 3.3.5 Annexin V-FITC/PI双染法定量检测细胞凋亡结果 | 第32页 |
| 3.3.6 胞内ROS水平测定结果 | 第32-33页 |
| 3.3.7 线粒体膜电位(△ψm)的检测结果 | 第33-35页 |
| 3.3.8 线粒体相关蛋白的表达情况 | 第35-37页 |
| 3.4 THC对MCF-7细胞的作用结果 | 第37-45页 |
| 3.4.1 THC对MCF-7细胞和H18485F5/M10细胞存活率的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.2 THC对MCF-7细胞、H18485F5/M10细胞毒性实验结果 | 第38-39页 |
| 3.4.3 THC对MCF-7肿瘤细胞形态学变化的影响 | 第39-40页 |
| 3.4.4 细胞周期分布检测结果 | 第40-41页 |
| 3.4.5 双染法定量检测细胞凋亡 | 第41页 |
| 3.4.6 胞内ROS水平测定结果 | 第41-42页 |
| 3.4.7 线粒体膜电位(△ψm)的检测结果 | 第42-43页 |
| 3.4.8 线粒体相关蛋白的表达情况 | 第43-45页 |
| 3.5 本章小结 | 第45-47页 |
| 第4章 结论 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-57页 |
| 致谢 | 第57-59页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第59页 |
