| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 绪论 | 第9-16页 |
| 1.1 紫菜概述 | 第9-10页 |
| 1.1.1 条斑紫菜的种植及生产情况 | 第9页 |
| 1.1.2 条斑紫菜的营养价值 | 第9-10页 |
| 1.1.3 条斑紫菜的加工利用 | 第10页 |
| 1.2 糖尿病的概述 | 第10-11页 |
| 1.3 α-淀粉酶抑制剂概况 | 第11-13页 |
| 1.3.1 α-淀粉酶抑制剂降糖机理 | 第11-12页 |
| 1.3.2 天然产物α-淀粉酶抑制剂 | 第12-13页 |
| 1.4 多糖降解方法研究 | 第13-14页 |
| 1.5 立题背景及研究意义 | 第14-16页 |
| 第二章 条斑紫菜多糖α-AI在加工和消化过程中的变化 | 第16-26页 |
| 2.1 实验材料与设备 | 第16页 |
| 2.1.1 实验材料与主要试剂 | 第16页 |
| 2.1.2 主要仪器与设备 | 第16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-19页 |
| 2.2.1 多糖α-AI水提物的制备 | 第16-17页 |
| 2.2.2 多糖浓度对α-AI活性的影响 | 第17页 |
| 2.2.3 加热处理对α-AI活性的影响 | 第17页 |
| 2.2.4 酸碱对α-AI抑制活性的影响 | 第17页 |
| 2.2.5 蛋白酶对α-AI活性的影响 | 第17页 |
| 2.2.6 模拟胃肠道环境对α-AI活性的影响 | 第17页 |
| 2.2.7 α-AI水提物喷干粉对α-淀粉酶抑制率的测定 | 第17页 |
| 2.2.8 分析方法 | 第17-19页 |
| 2.2.9 数据处理 | 第19页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第19-25页 |
| 2.3.1 多糖α-AI水提物的制备 | 第19-20页 |
| 2.3.2 多糖浓度对α-AI活性的影响 | 第20-21页 |
| 2.3.3 加热处理对α-AI活性的影响 | 第21-22页 |
| 2.3.4 酸碱处理对α-AI活性的影响 | 第22-23页 |
| 2.3.5 蛋白酶对α-AI活性的影响 | 第23页 |
| 2.3.6 模拟胃肠道对α-AI活性的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.7 α-AI水提物喷干粉与市售商品Phase2对α-淀粉酶抑制率的测定 | 第24-25页 |
| 2.4 本章小结 | 第25-26页 |
| 第三章 条斑紫菜多糖α-AI粗提物的制备工艺及分离纯化 | 第26-40页 |
| 3.1 实验材料与设备 | 第26页 |
| 3.1.1 实验原料与主要试剂 | 第26页 |
| 3.1.2 主要仪器与设备 | 第26页 |
| 3.2 实验方法 | 第26-31页 |
| 3.2.1 条斑紫菜多糖α-AI粗提物的制备工艺 | 第26-27页 |
| 3.2.2 CaCl2添加量对条斑紫菜中α-AI提取率的影响 | 第27页 |
| 3.2.3 料液比对条斑紫菜中α-AI提取率的影响 | 第27-28页 |
| 3.2.4 提取温度对条斑紫菜中α-AI提取率的影响 | 第28页 |
| 3.2.5 提取时间对条斑紫菜中α-AI提取率的影响 | 第28页 |
| 3.2.6 无水乙醇浓度对条斑紫菜中α-AI提取率的影响 | 第28页 |
| 3.2.7 三氯乙酸(TCA)浓度和时间对蛋白脱除率和多糖损失率的影响 | 第28页 |
| 3.2.8 DEAECellulose-52离子柱层析法纯化条斑紫菜多糖 | 第28-29页 |
| 3.2.9 紫菜多糖的纯度鉴定 | 第29页 |
| 3.2.10 条斑紫菜粗多糖及纯化产品的理化性质测定 | 第29-31页 |
| 3.2.11 数据处理 | 第31页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第31-38页 |
| 3.3.1 CaCl2添加量对条斑紫菜中α-AI提取率的影响 | 第31页 |
| 3.3.2 料液比对条斑紫菜中α-AI提取率的影响 | 第31-32页 |
| 3.3.3 提取温度对条斑紫菜中α-AI提取率的影响 | 第32页 |
| 3.3.4 提取时间对条斑紫菜中α-AI提取率的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.5 无水乙醇浓度对条斑紫菜中α-AI提取率的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.6 条斑紫菜中多糖α-AI去除蛋白质的优化 | 第34-35页 |
| 3.3.7 条斑紫菜中多糖α-AI的分离纯化 | 第35-38页 |
| 3.4 本章小结 | 第38-40页 |
| 第四章 条斑紫菜多糖α-AI粗提物过氧化氢降解实验及小鼠餐后血糖研究 | 第40-52页 |
| 4.1 实验材料与设备 | 第40-41页 |
| 4.1.1 实验原料与主要试剂 | 第40页 |
| 4.1.2 主要仪器与设备 | 第40-41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-43页 |
| 4.2.1 多糖的降解 | 第41页 |
| 4.2.2 过氧化氢降解多糖平均相对相对分子质量的测定 | 第41页 |
| 4.2.3 SephadexG25葡聚糖凝胶色谱法纯化降解多糖 | 第41页 |
| 4.2.4 SephadexG-10葡聚糖凝胶色谱法进一步纯化 | 第41页 |
| 4.2.5 PD6-1对α-淀粉酶活性的IC50测定 | 第41-42页 |
| 4.2.6 PD6-1抑制类型的测定 | 第42页 |
| 4.2.7 圆二色谱分析PD6-1和α-淀粉酶作用 | 第42页 |
| 4.2.8 荧光光谱分析PD6-1和α-淀粉酶作用 | 第42页 |
| 4.2.9 实验动物模型选择及分组 | 第42-43页 |
| 4.2.10 小鼠体重检测 | 第43页 |
| 4.2.11 小鼠空腹血糖检测 | 第43页 |
| 4.2.12 小鼠餐后血糖检测 | 第43页 |
| 4.2.13 数据处理 | 第43页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第43-51页 |
| 4.3.1 条斑紫菜多糖降解前后相对分子质量测定 | 第43-45页 |
| 4.3.2 SephadexG-25分离纯化降解多糖 | 第45页 |
| 4.3.3 SephadexG-10进一步分离纯化 | 第45-46页 |
| 4.3.4 PD6-1对α-淀粉酶的IC50测定 | 第46页 |
| 4.3.5 PD6-1的抑制动力学研究 | 第46-48页 |
| 4.3.6 圆二色谱分析PD6-1与α-淀粉酶的相互作用 | 第48-49页 |
| 4.3.7 荧光光谱分析PD6-1对α-淀粉酶内源荧光的猝灭 | 第49页 |
| 4.3.8 PD6-1对小鼠体重的影响 | 第49-50页 |
| 4.3.9 PD6-1对小鼠空腹血糖的影响 | 第50页 |
| 4.3.10 PD6-1对小鼠餐后血糖的影响 | 第50-51页 |
| 4.4 本章小结 | 第51-52页 |
| 主要结论与展望 | 第52-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第60页 |
