| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第7-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-21页 |
| 1.1 类黄酮的研究 | 第11-16页 |
| 1.1.1 类黄酮的分类 | 第11-12页 |
| 1.1.2 类黄酮的功能 | 第12-16页 |
| 1.2 脂肪细胞 | 第16-19页 |
| 1.2.1 3T3-L1前脂肪细胞 | 第16页 |
| 1.2.2 前脂肪细胞分化过程中的转录调控 | 第16-18页 |
| 1.2.3 肥胖与脂肪细胞 | 第18-19页 |
| 1.3 研究思路 | 第19页 |
| 1.4 研究目的及内容 | 第19-21页 |
| 1.4.1 研究目的 | 第19-20页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第20-21页 |
| 第二章 根皮苷氧化物POP2酶促氧化反应体系及其结构表征 | 第21-35页 |
| 2.1 引言 | 第21-22页 |
| 2.2 材料与设备 | 第22-23页 |
| 2.2.1 实验原料与试剂 | 第22页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第22-23页 |
| 2.3 实验方法与内容 | 第23-26页 |
| 2.3.1 酶促氧化体系的优化 | 第23-24页 |
| 2.3.2 酶促反应历程 | 第24页 |
| 2.3.3 根皮苷氧化物的纯化 | 第24页 |
| 2.3.4 氧化物的结构鉴定 | 第24-25页 |
| 2.3.5 POP2清除自由基活性 | 第25-26页 |
| 2.4 结果与分析 | 第26-33页 |
| 2.4.1 pH、底物浓度、温度对酶促氧化速率的影响及分析 | 第26-27页 |
| 2.4.2 酶促反应历程的分析 | 第27-30页 |
| 2.4.3 POP2的纯化结果分析 | 第30页 |
| 2.4.4 POP2的结构表征分析 | 第30-32页 |
| 2.4.5 POP2清除自由基活性 | 第32-33页 |
| 2.5 本章小结 | 第33-35页 |
| 第三章 POP2对3T3-L1前脂肪细胞增殖与分化的影响 | 第35-45页 |
| 3.1 引言 | 第35页 |
| 3.2 材料与设备 | 第35-37页 |
| 3.2.1 实验细胞株 | 第35页 |
| 3.2.2 实验原料与试剂 | 第35-36页 |
| 3.2.3 仪器与设备 | 第36-37页 |
| 3.3 实验方法与内容 | 第37-40页 |
| 3.3.1 3T3-L1细胞的培养 | 第37-38页 |
| 3.3.2 POP2对3T3-L1前脂肪细胞增殖和毒性的影响 | 第38-39页 |
| 3.3.3 POP2对3T3-L1前脂肪细胞分化的影响 | 第39-40页 |
| 3.4 结果与分析 | 第40-43页 |
| 3.4.1 POP2对3T3-L1前脂肪细胞增殖和毒性的影响 | 第40-41页 |
| 3.4.2 POP2对3T3-L1前脂肪细胞分化的影响 | 第41-43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-45页 |
| 第四章 POP2对3T3-L1脂肪细胞分化过程中相关基因mRNA和蛋白的表达 | 第45-57页 |
| 4.1 引言 | 第45页 |
| 4.2 材料与设备 | 第45-47页 |
| 4.2.1 实验细胞株 | 第45页 |
| 4.2.2 实验原料与试剂 | 第45-46页 |
| 4.2.3 仪器与设备 | 第46-47页 |
| 4.3 实验方法与内容 | 第47-51页 |
| 4.3.1 总RNA的提取 | 第47页 |
| 4.3.2 RNA的反转录 | 第47-48页 |
| 4.3.3 RT-PCR引物 | 第48页 |
| 4.3.4 荧光定量PCR | 第48-49页 |
| 4.3.5 总蛋白的提取 | 第49页 |
| 4.3.6 蛋白免疫印记分析 | 第49-51页 |
| 4.3.7 数据分析 | 第51页 |
| 4.4 结果与分析 | 第51-55页 |
| 4.4.1 POP2对3T3-L1前脂肪细胞分化过程中相关转录因子mRNA的表达 | 第51-54页 |
| 4.4.2 POP2对3T3-L1前脂肪细胞分化过程中相关蛋白的表达 | 第54-55页 |
| 4.5 本章小结 | 第55-57页 |
| 第五章 结论与展望 | 第57-59页 |
| 5.1 结论 | 第57-58页 |
| 5.2 展望 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-71页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第71页 |
