摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
英文缩写词对照表 | 第12-13页 |
第一章 综述 | 第13-29页 |
1 自由基与氧化损伤 | 第13-15页 |
1.1 自由基定义 | 第13页 |
1.2 自由基的产生与种类 | 第13页 |
1.3 活性氧自由基与氧化损伤 | 第13-15页 |
1.4 机体内重要的抗氧化系统 | 第15页 |
2 松花粉提取物(Pine Pollen Extracts, PPE) | 第15-19页 |
2.1 松花粉简介 | 第15-16页 |
2.2 人类对花粉的认识及利用 | 第16页 |
2.3 松花粉的营养成分分析 | 第16-17页 |
2.4 松花粉的功效 | 第17-19页 |
2.5 松花粉的破壁 | 第19页 |
3 葡萄籽提取物(Grape Seed Extracts, GSE) | 第19-23页 |
3.1 化学成分 | 第19-20页 |
3.2 生物利用率 | 第20-21页 |
3.3 生物活性 | 第21-23页 |
3.4 毒性评价 | 第23页 |
4 竹叶黄酮(Flavone of Bamboo leaves, FOB) | 第23-26页 |
4.1 竹叶黄酮 | 第23-24页 |
4.2 竹叶黄酮分离与鉴定 | 第24页 |
4.3 竹叶黄酮生物作用 | 第24-26页 |
4.4 竹叶黄酮安全性评价 | 第26页 |
5 立题依据与主要内容 | 第26-29页 |
5.1 立题依据 | 第26-27页 |
5.2 论文研究内容 | 第27-29页 |
第二章 H_2O_2氧化损伤模型的建立以及三种植物提取物对氧化损伤PC12细胞作用浓度的选择 | 第29-41页 |
1 实验材料及设备 | 第29-31页 |
1.1 试验材料与试剂 | 第29-30页 |
1.2 仪器与设备 | 第30页 |
1.3 试剂的配制 | 第30-31页 |
1.4 提取物及标准品的配制 | 第31页 |
2 实验方法 | 第31-35页 |
2.1 细胞培养技术 | 第31-33页 |
2.2 PC12细胞氧化损伤模型的建立 | 第33页 |
2.3 三种植物提取物作用浓度的选择 | 第33-34页 |
2.4 阳性对照组物质作用浓度的选择 | 第34-35页 |
2.5 统计学方法分析 | 第35页 |
3 实验结果 | 第35-38页 |
3.1 PC12细胞氧化损伤模型的建立 | 第35页 |
3.2 物质作用浓度的选择结果 | 第35-37页 |
3.3 阳性对照组物质浓度选择结果 | 第37-38页 |
4 本章讨论 | 第38-41页 |
第三章 松花粉提取物对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞保护作用的研究以及机理的初步探究 | 第41-63页 |
1 实验材料及设备 | 第41-43页 |
1.1 实验材料与试剂 | 第41-42页 |
1.2 仪器与设备 | 第42页 |
1.3 提取物及标准品的配制 | 第42-43页 |
2 实验方法 | 第43-52页 |
2.1 MTT法测定细胞存活率 | 第43-44页 |
2.2 细胞氧化因子的测定 | 第44-47页 |
2.3 细胞内抗氧化酶及抗氧化物的测定 | 第47-50页 |
2.4 松花粉提取物保护机理的初步探究 | 第50-52页 |
2.5 统计学方法分析 | 第52页 |
3 结果与讨论 | 第52-60页 |
3.1 松花粉提取物对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞存活率的影响 | 第52-53页 |
3.2 松花粉提取物对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞氧化因子的影响 | 第53-55页 |
3.3 松花粉提取物对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞抗氧化酶及抗氧化物的影响 | 第55-57页 |
3.4 松花粉提取物对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞保护机理的初步探究 | 第57-60页 |
4 本章讨论 | 第60-63页 |
第四章 葡萄籽提取物对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞保护作用的研究以及机理的初步探究 | 第63-75页 |
1 实验材料及试剂 | 第63-65页 |
1.1 试验材料与试剂 | 第63-64页 |
1.2 仪器与设备 | 第64页 |
1.3 提取物及标准品的配制 | 第64-65页 |
2 实验方法 | 第65-66页 |
2.1 细胞前处理 | 第65页 |
2.2 MTT法测定细胞存活率 | 第65-66页 |
2.3 细胞氧化因子的测定 | 第66页 |
2.4 细胞抗氧化酶及抗氧化物的测定 | 第66页 |
2.5 细胞保护机理的初步探究 | 第66页 |
2.6 统计学方法分析 | 第66页 |
3 结果与讨论 | 第66-73页 |
3.1 葡萄籽提取物对氧化损伤PC12细胞存活率的影响 | 第66-67页 |
3.2 葡萄籽提取物对氧化损伤PC12细胞氧化因子的影响 | 第67-69页 |
3.3 葡萄籽提取物对氧化损伤PC12细胞抗氧化酶和抗氧化物的影响 | 第69-70页 |
3.4 葡萄籽提取物对氧化损伤PC12细胞保护机理的初步探究结果 | 第70-73页 |
4 讨论 | 第73-75页 |
第五章 竹叶黄酮对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞保护作用的研究以及机理的初步探究 | 第75-87页 |
1 实验材料及试剂 | 第75-77页 |
1.1 试验材料与试剂 | 第75-76页 |
1.2 仪器与设备 | 第76页 |
1.3 提取物及标准品的配制 | 第76-77页 |
2 实验方法 | 第77-78页 |
2.1 细胞前处理 | 第77页 |
2.2 MTT法测定细胞存活率 | 第77-78页 |
2.3 细胞氧化因子的测定 | 第78页 |
2.4 细胞内抗氧化酶及抗氧化物的测定 | 第78页 |
2.5 保护机理的初步探究 | 第78页 |
2.6 统计学方法分析 | 第78页 |
3 实验结果 | 第78-85页 |
3.1 竹叶黄酮对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞存活率测定结果 | 第78-79页 |
3.2 竹叶黄酮对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞氧化因子的测定结果 | 第79-81页 |
3.3 竹叶黄酮对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞抗氧化酶和抗氧化物的影响 | 第81-83页 |
3.4 竹叶黄酮对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞保护机理的初步探究结果 | 第83-85页 |
4 本章讨论 | 第85-87页 |
第六章 三种植物提取物对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞保护作用的比较 | 第87-94页 |
1 三种植物提取物对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞存活率作用结果的比较 | 第87页 |
2 三种植物提取物对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞氧化因子作用结果的比较 | 第87-89页 |
3 三种植物提取物对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞抗氧化物作用结果的比较 | 第89-91页 |
4 三种植物提取物对H_2O_2诱导氧化损伤PC12细胞保护机理探究结果的比较 | 第91-94页 |
结论 | 第94-95页 |
参考文献 | 第95-101页 |
发表的论文 | 第101-102页 |
致谢 | 第102页 |