摘要 | 第1-6页 |
ABSTRACT | 第6-11页 |
第1章 绪论 | 第11-27页 |
·立题背景和意义 | 第11-14页 |
·国内外研究进展 | 第14-25页 |
·木瓜蛋白酶的来源、结构及功能 | 第14-17页 |
·木瓜蛋白酶降解壳聚糖的研究进展 | 第17-19页 |
·木瓜蛋白酶分离纯化的研究进展 | 第19-21页 |
·其他非专一性酶具有壳聚糖酶活性组分分离纯化的研究进展 | 第21-23页 |
·电泳技术在酶分离纯化中的研究进展 | 第23-25页 |
·课题的研究内容 | 第25-27页 |
·课题研究的目的 | 第25页 |
·研究内容 | 第25-27页 |
第2章 木瓜蛋白酶降解壳聚糖的特性研究 | 第27-41页 |
·材料与方法 | 第27-31页 |
·试验材料 | 第27页 |
·试验设备 | 第27-28页 |
·试验方法 | 第28-31页 |
·实验内容 | 第31-33页 |
·木瓜蛋白酶的筛选 | 第31页 |
·壳聚糖结构对降解作用的影响 | 第31页 |
·底物浓度对酶降解反应的影响 | 第31-32页 |
·pH对酶降解反应的影响 | 第32页 |
·温度对酶降解反应的影响 | 第32页 |
·酶底物比对酶降解反应的影响 | 第32页 |
·时间对酶降解反应的影响 | 第32页 |
·酶降解反应过程中粘度的测定 | 第32-33页 |
·木瓜蛋白酶水解壳聚糖产物的分析 | 第33页 |
·结果与讨论 | 第33-40页 |
·壳聚糖脱乙酰度的测定 | 第33-34页 |
·木瓜蛋白酶的筛选 | 第34页 |
·选择合适的壳聚糖进行酶水解研究 | 第34页 |
·木瓜蛋白酶降解壳聚糖的特性研究 | 第34-37页 |
·酶解过程中粘度的变化 | 第37-38页 |
·木瓜蛋白酶降解壳聚糖产物的相对分子质量分布 | 第38-40页 |
·本章小结 | 第40-41页 |
第3章 超滤分离去除木瓜蛋白酶小分子组分的研究 | 第41-53页 |
·材料与方法 | 第41-46页 |
·试验材料 | 第41-42页 |
·试验设备 | 第42页 |
·试验方法 | 第42-46页 |
·实验内容 | 第46-47页 |
·中空纤维膜的超滤分离效果 | 第46页 |
·操作时间对超滤的影响 | 第46页 |
·操作压力对超滤的影响 | 第46-47页 |
·超滤浓缩倍数对壳聚糖酶活力的影响 | 第47页 |
·超滤过程中蛋白酶活力的变化 | 第47页 |
·木瓜蛋白酶超滤分离样品的制备 | 第47页 |
·超滤前后木瓜蛋白酶样品的分析 | 第47页 |
·结果与讨论 | 第47-52页 |
·中空纤维膜的超滤分离效果 | 第47-48页 |
·操作时间对超滤的影响 | 第48页 |
·操作压力对超滤的影响 | 第48-49页 |
·超滤浓缩倍数对壳聚糖酶活力的影响 | 第49-50页 |
·超滤中木瓜蛋白酶的蛋白酶活力变化分析 | 第50页 |
·超滤前后的酶活力比较 | 第50-51页 |
·超滤前后的木瓜蛋白酶的SDS-PAGE分析 | 第51页 |
·超滤前后木瓜蛋白酶的成分分析 | 第51-52页 |
·本章小结 | 第52-53页 |
第4章 具有水解壳聚糖活性的酶组分的纯化及纯度鉴定 | 第53-63页 |
·材料与方法 | 第53-56页 |
·试验材料 | 第53页 |
·试验设备 | 第53页 |
·试验方法 | 第53-56页 |
·实验内容 | 第56-58页 |
·聚丙烯酰胺凝胶电泳条件的确定 | 第56页 |
·聚丙烯酰胺凝胺电泳分离 | 第56-57页 |
·蛋白凝胶带的制取 | 第57页 |
·凝胶带中酶组分的电洗脱回收 | 第57页 |
·透析去盐 | 第57页 |
·目标条带的确定 | 第57页 |
·酶组分的纯度鉴定 | 第57-58页 |
·纯化酶组分的氨基酸测序 | 第58页 |
·结果与讨论 | 第58-62页 |
·制备电泳分离纯化 | 第58-60页 |
·SDS-PAGE纯度鉴定 | 第60页 |
·高效液相鉴定纯化组分的纯度 | 第60-61页 |
·纯化组分的氨基酸测序 | 第61-62页 |
·本章小结 | 第62-63页 |
第5章 结论与展望 | 第63-65页 |
·结论 | 第63-64页 |
·创新之处 | 第64页 |
·展望 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-71页 |
致谢 | 第71-72页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第72页 |