| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第11-23页 |
| 1.1 琼胶寡糖的概述 | 第11-12页 |
| 1.2 琼胶寡糖的制备 | 第12-16页 |
| 1.2.1 酸水解法 | 第12-13页 |
| 1.2.2 氧化还原法 | 第13页 |
| 1.2.3 酶解法 | 第13-16页 |
| 1.3 琼胶寡糖活性的研究进展 | 第16-21页 |
| 1.3.1 琼寡糖的生物活性 | 第16-19页 |
| 1.3.2 新琼寡糖的生物活性 | 第19-21页 |
| 1.4 本课题的研究意义和内容 | 第21-23页 |
| 1.4.1 研究目的和意义 | 第21-22页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第22-23页 |
| 第2章 琼胶酶的中试放大生产及其循环利用 | 第23-37页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第23-25页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第24-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-30页 |
| 2.2.1 DNS法测琼胶酶酶活 | 第25-27页 |
| 2.2.2 发酵罐实验 | 第27页 |
| 2.2.3 琼胶酶的提取 | 第27-28页 |
| 2.2.4 琼胶酶的循环利用 | 第28页 |
| 2.2.5 离心时间对琼胶酶酶活影响 | 第28页 |
| 2.2.6 超滤离心过程中琼胶酶浓度的变化 | 第28-30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-35页 |
| 2.3.1 发酵罐中试放大生产效果 | 第30-31页 |
| 2.3.2 琼胶酶盐析后损失率 | 第31页 |
| 2.3.3 琼胶酶的循环利用 | 第31-33页 |
| 2.3.4 离心时间对琼胶酶酶活影响 | 第33-34页 |
| 2.3.5 超滤离心过程中琼胶酶浓度的变化 | 第34-35页 |
| 2.4 小结 | 第35-37页 |
| 第3章 新琼寡糖的分离纯化 | 第37-51页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第37-39页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第37-38页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第38-39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-40页 |
| 3.2.1 新琼寡糖的制备 | 第39页 |
| 3.2.2 新琼寡糖的分离纯化 | 第39-40页 |
| 3.2.3 新琼寡糖的检测方法 | 第40页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第40-49页 |
| 3.3.1 不同酶解时间反应产物TLC分析图 | 第40-42页 |
| 3.3.2 不同浓度乙醇溶液洗脱产物的TLC分析图 | 第42页 |
| 3.3.3 新琼寡糖过柱分离后的TLC分析图 | 第42-45页 |
| 3.3.4 新琼寡糖的HPLC结果 | 第45-49页 |
| 3.4 小结 | 第49-51页 |
| 第4章 新琼寡糖预防脂肪肝作用 | 第51-67页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第52-54页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第52-53页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第53页 |
| 4.1.3 试剂的配制 | 第53-54页 |
| 4.2 实验方法 | 第54-58页 |
| 4.2.1 MTT法检测细胞存活率 | 第54页 |
| 4.2.2 油酸诱导的HepG2细胞脂肪变性模型建模方法 | 第54页 |
| 4.2.3 油红O染色程序 | 第54-55页 |
| 4.2.4 BCA法测细胞蛋白浓度 | 第55-56页 |
| 4.2.5 TG含量的测定 | 第56页 |
| 4.2.6 新琼寡糖的MTT实验 | 第56页 |
| 4.2.7 新琼寡糖对脂肪变性HepG2细胞脂滴形成的影响 | 第56页 |
| 4.2.8 新琼寡糖对脂肪变性HepG2细胞内TG含量的影响 | 第56-57页 |
| 4.2.9 新琼寡糖对脂肪变性HepG2细胞SOD活性的影响 | 第57页 |
| 4.2.10 新琼寡糖脂肪变性HepG2细胞内MDA含量的影响 | 第57页 |
| 4.2.11 统计学分析 | 第57-58页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第58-65页 |
| 4.3.1 油酸对HepG2细胞存活率影响 | 第58-59页 |
| 4.3.2 脂肪变性HepG2细胞油红O染色 | 第59-60页 |
| 4.3.3 新琼寡糖对HepG2细胞存活率影响 | 第60-61页 |
| 4.3.4 新琼寡糖对脂肪变性HepG2细胞脂滴染色结果 | 第61-62页 |
| 4.3.5 新琼寡糖脂肪变性HepG2细胞内TG含量的影响 | 第62-63页 |
| 4.3.6 新琼寡糖对脂肪变性HepG2细胞内SOD活性的影响 | 第63-64页 |
| 4.3.7 新琼寡糖对脂肪变性HepG2细胞内MDA含量的影响 | 第64-65页 |
| 4.4 小结 | 第65-67页 |
| 第5章 新琼寡糖体外降血脂作用 | 第67-83页 |
| 5.1 实验材料与仪器 | 第67-69页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第67-68页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第68-69页 |
| 5.2 实验方法 | 第69-72页 |
| 5.2.1 MTT法检测细胞存活率 | 第69页 |
| 5.2.2 HepG2细胞高脂模型建模方法 | 第69页 |
| 5.2.3 蛋白浓度的测定 | 第69页 |
| 5.2.4 HepG2细胞TG内含量的测定 | 第69页 |
| 5.2.5 新琼寡糖对高脂模型HepG2细胞内TG含量的影响 | 第69页 |
| 5.2.6 新琼寡糖对高脂模型HepG2细胞内SOD活性的影响 | 第69-70页 |
| 5.2.7 新琼寡糖对高脂模型HepG2细胞内MDA含量的影响 | 第70页 |
| 5.2.8 HepG2细胞高胆固醇模型建模方法 | 第70页 |
| 5.2.9 HepG2细胞TC含量的测定 | 第70页 |
| 5.2.10 新琼寡糖对高胆固醇模型的HepG2细胞内TC含量的影响 | 第70-71页 |
| 5.2.11 新琼寡糖对高胆固醇模型的HepG2细胞内SOD活性的影响 | 第71页 |
| 5.2.12 新琼寡糖对高胆固醇模型的HepG2细胞内MDA的影响 | 第71页 |
| 5.2.13 统计学分析 | 第71-72页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第72-82页 |
| 5.3.1 不同浓度血清的对HepG2细胞存活率的影响 | 第72-73页 |
| 5.3.2 HepG2细胞内TG的含量 | 第73-74页 |
| 5.3.3 新琼寡糖对高脂模型HepG2细胞内TG含量的影响 | 第74-75页 |
| 5.3.4 新琼寡糖对高脂模型HepG2细胞內SOD活性的影响 | 第75-76页 |
| 5.3.5 新琼寡糖对高脂模型HepG2细胞内MDA含量的影响 | 第76-77页 |
| 5.3.6 胆固醇对HepG2细胞存活率的影响 | 第77-78页 |
| 5.3.7 胆固醇对HepG2细胞内TC的含量的影响 | 第78-79页 |
| 5.3.8 新琼寡糖对高胆固醇模型的HepG2细胞內TC含量的影响 | 第79-80页 |
| 5.3.9 新琼寡糖对高胆固醇模型的HepG2细胞內SOD活性的影响 | 第80-81页 |
| 5.3.10 新琼寡糖对高胆固醇模型的HepG2细胞内MDA含量的影响 | 第81-82页 |
| 5.4 小结 | 第82-83页 |
| 第6章 结论与展望 | 第83-85页 |
| 6.1 结论 | 第83-84页 |
| 6.2 展望 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-93页 |
| 致谢 | 第93-95页 |
| 个人简历及在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第95页 |
