| 摘要 | 第10-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第13-23页 |
| 1.1 食品中的美拉德反应 | 第13-14页 |
| 1.1.1 美拉德反应简介 | 第13页 |
| 1.1.2 美拉德反应各阶段产物及其性质 | 第13-14页 |
| 1.1.3 美拉德反应产物的安全性 | 第14页 |
| 1.2 晚期糖基化终末产物(AGEs)的研究现状 | 第14-17页 |
| 1.2.1 AGEs的特性 | 第14-15页 |
| 1.2.2 AGEs的形成机制 | 第15页 |
| 1.2.3 AGEs的致病机理 | 第15-16页 |
| 1.2.4 AGEs测定 | 第16页 |
| 1.2.5 食物内普通AGEs | 第16-17页 |
| 1.2.6 抑制食品中AGEs生成的研究现状 | 第17页 |
| 1.3 芦荟中主要活性成分及特性 | 第17-20页 |
| 1.3.1 芦荟中的生物活性成分 | 第18-19页 |
| 1.3.2 芦荟生物活性成分的特性 | 第19-20页 |
| 1.4 芦荟蒽醌的提取方法 | 第20-21页 |
| 1.4.1 超声提取法 | 第20-21页 |
| 1.4.2 溶剂法 | 第21页 |
| 1.4.3 CO_2萃取法 | 第21页 |
| 1.5 本课题立题依据 | 第21-23页 |
| 1.5.1 研究目的与意义 | 第21-22页 |
| 1.5.2 研究的主要内容 | 第22-23页 |
| 第二章 响应面优化芦荟蒽醌类物质的提取条件 | 第23-34页 |
| 2.1 材料与设备 | 第23-24页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第23页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第23-24页 |
| 2.2 试验方法 | 第24-26页 |
| 2.2.1 原料处理 | 第24页 |
| 2.2.2 芦荟蒽醌类化合物的提取方法 | 第24页 |
| 2.2.3 芦荟蒽醌类化合物含量测定方法 | 第24页 |
| 2.2.4 响应面试验设计 | 第24-25页 |
| 2.2.5 芦荟中主要蒽醌类化合物的鉴定 | 第25-26页 |
| 2.2.6 芦荟蒽醌类化合物提取液的抗糖基化试验 | 第26页 |
| 2.2.7 数据分析 | 第26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-33页 |
| 2.3.1 响应面法优化芦荟中蒽醌物质的提取条件 | 第26-32页 |
| 2.3.2 芦荟中主要蒽醌类化合物的鉴定 | 第32页 |
| 2.3.3 蒽醌类物质提取液对糖基化反应的抑制作用 | 第32-33页 |
| 2.4 本章小结 | 第33-34页 |
| 第三章 大黄素对赖氨酸模拟体系中晚期糖基化反应的抑制作用 | 第34-41页 |
| 3.1 材料与方法 | 第34页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第34页 |
| 3.2 试验方法 | 第34-36页 |
| 3.2.1 建立Lys-Glc模拟反应体系 | 第34页 |
| 3.2.2 果糖胺的测定 | 第34-35页 |
| 3.2.3 GO的测定 | 第35页 |
| 3.2.4 CML的测定 | 第35页 |
| 3.2.5 5-HMF的测定 | 第35页 |
| 3.2.6 类黑精的测定 | 第35页 |
| 3.2.7 戊糖素的测定 | 第35页 |
| 3.2.8 fl-AGEs的测定 | 第35页 |
| 3.2.9 数据分析 | 第35-36页 |
| 3.3 结果与分析 | 第36-39页 |
| 3.3.1 大黄素对果糖胺生成的抑制作用 | 第36页 |
| 3.3.2 大黄素对GO生成的抑制作用 | 第36-37页 |
| 3.3.3 大黄素对CML生成的抑制作用 | 第37页 |
| 3.3.4 大黄素对5-HMF生成的抑制作用 | 第37-38页 |
| 3.3.5 大黄素对类黑精生成的抑制作用 | 第38页 |
| 3.3.6 大黄素对戊糖素生成的抑制作用 | 第38-39页 |
| 3.3.7 大黄素对荧光性AGEs生成的抑制作用 | 第39页 |
| 3.4 本章小结 | 第39-41页 |
| 第四章 芦荟中主要蒽醌类物质对蛋白模拟体系中糖基化反应抑制作用 | 第41-48页 |
| 4.1 材料与设备 | 第41页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第41页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第41页 |
| 4.2 试验方法 | 第41-43页 |
| 4.2.1 BSA-Glc反应体系的建立 | 第41-42页 |
| 4.2.2 最适抑制浓度的选择 | 第42页 |
| 4.2.3 抗糖基化作用的测定 | 第42-43页 |
| 4.2.4 氧自由基吸收能力(ORAC)的测定 | 第43页 |
| 4.2.5 蛋白交联性的测定 | 第43页 |
| 4.2.6 数据分析 | 第43页 |
| 4.3 结果与分析 | 第43-47页 |
| 4.3.1 最佳抑制剂浓度的选择 | 第43-44页 |
| 4.3.2 抗糖基化作用的分析 | 第44-45页 |
| 4.3.3 氧自由基吸收能力(ORAC)的测定 | 第45-46页 |
| 4.3.4 蛋白交联性的测定 | 第46-47页 |
| 4.4 本章小结 | 第47-48页 |
| 第五章 讨论与结论 | 第48-51页 |
| 5.1 讨论 | 第48-50页 |
| 5.1.1 芦荟蒽醌类物质的提取率 | 第48页 |
| 5.1.2 糖基化反应的温度 | 第48页 |
| 5.1.3 大黄素对赖氨酸模拟体系中糖基化反应的抑制 | 第48-49页 |
| 5.1.4 芦荟中主要蒽醌类物质对蛋白模拟体系中糖基化反应的抑制 | 第49页 |
| 5.1.5 最适浓度抑制剂的安全性 | 第49-50页 |
| 5.2 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第59-60页 |
