| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 第1章 绪论 | 第15-23页 |
| 1.1 引言 | 第15页 |
| 1.2 木聚糖的制备 | 第15-16页 |
| 1.3 木聚糖修饰的研究 | 第16-17页 |
| 1.4 分离纯化 | 第17-18页 |
| 1.4.1 离子交换色谱 | 第17页 |
| 1.4.2 凝胶过滤色谱 | 第17-18页 |
| 1.5 木聚糖及其衍生物的生物学活性 | 第18-20页 |
| 1.5.1 木聚糖的生物活性 | 第18-19页 |
| 1.5.1.1 免疫调节活性 | 第18页 |
| 1.5.1.2 抗氧化活性 | 第18页 |
| 1.5.1.3 抗肿瘤活性 | 第18-19页 |
| 1.5.2 硫酸酯化木聚糖的生物活性 | 第19-20页 |
| 1.5.2.1 抗炎活性 | 第19页 |
| 1.5.2.2 抗病毒活性 | 第19页 |
| 1.5.2.3 抗癌活性 | 第19页 |
| 1.5.2.4 抗凝活性 | 第19-20页 |
| 1.6 理化分析 | 第20-21页 |
| 1.6.1 结构鉴定 | 第20页 |
| 1.6.2 纯度分析及分子量的测定 | 第20-21页 |
| 1.6.3 化学组成 | 第21页 |
| 1.7 论文选题背景和研究的主要内容 | 第21-23页 |
| 第2章 玉米芯木聚糖的提取及其条件的优化 | 第23-36页 |
| 2.1 前言 | 第23页 |
| 2.2 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.2.1 材料 | 第23页 |
| 2.2.2 仪器 | 第23-24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-26页 |
| 2.3.1 木聚糖提取工艺流程简图 | 第24页 |
| 2.3.2 多糖含量测定 | 第24-25页 |
| 2.3.3 单因素实验 | 第25-26页 |
| 2.3.4 提取工艺优化 | 第26页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第26-35页 |
| 2.4.1 多糖含量的测定 | 第26-27页 |
| 2.4.2 单因素实验结果 | 第27-30页 |
| 2.4.2.1 碱浓度对木聚糖提取得率的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.2.2 提取时间对木聚糖提取得率的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.2.3 提取温度木聚糖提取得率的影响 | 第29-30页 |
| 2.4.2.4 液固比对木聚糖提取得率的影响 | 第30页 |
| 2.4.3 响应面结果分析 | 第30-35页 |
| 2.4.3.1 Box-Behnken实验结果分析 | 第30-34页 |
| 2.4.3.2 响应面回归模型的建立 | 第34-35页 |
| 2.4.3.3 各因素水平的优化 | 第35页 |
| 2.5 结论 | 第35-36页 |
| 第3章 木聚糖的初步纯化、磺化及其优化 | 第36-49页 |
| 3.1 前言 | 第36页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第36-37页 |
| 3.2.1 材料 | 第36-37页 |
| 3.2.2 仪器 | 第37页 |
| 3.3 方法 | 第37-42页 |
| 3.3.1 木聚糖的提取 | 第37页 |
| 3.3.2 多糖含量的测定 | 第37-38页 |
| 3.3.3 蛋白质含量的测定 | 第38页 |
| 3.3.4 木聚糖的分离及初步纯化 | 第38-39页 |
| 3.3.4.1 木聚糖的分离 | 第38页 |
| 3.3.4.2 WS-CCX的脱色脱蛋白 | 第38-39页 |
| 3.3.4.3 WIS-CCX的纯化 | 第39页 |
| 3.3.5 木聚糖的磺化 | 第39-40页 |
| 3.3.5.1 磺化试剂的制备 | 第39页 |
| 3.3.5.2 磺化反应 | 第39-40页 |
| 3.3.6 磺化取代度的测定 | 第40-41页 |
| 3.3.6.1 溶液的配制 | 第40页 |
| 3.3.6.2 硫酸盐标准曲线的制作 | 第40页 |
| 3.3.6.3 样品硫酸基含量的测定 | 第40-41页 |
| 3.3.6.4 计算公式 | 第41页 |
| 3.3.7 木聚糖磺化单因素实验 | 第41页 |
| 3.3.8 磺化工艺优化 | 第41-42页 |
| 3.4 实验结果 | 第42-47页 |
| 3.4.1 蛋白质测定的标准曲线 | 第42页 |
| 3.4.2 WS-CCX和WIS-CCX的脱蛋白效果及组成分析 | 第42-43页 |
| 3.4.3 硫酸盐标准曲线 | 第43页 |
| 3.4.4 磺化单因素实验结果 | 第43-46页 |
| 3.4.4.1 磺化时间对木聚糖磺化取代度的影响 | 第44-45页 |
| 3.4.4.2 磺化温度对木聚糖磺化取代度的影响 | 第45-46页 |
| 3.4.4.3 磺化试剂比例对木聚糖磺化取代度的影响 | 第46页 |
| 3.4.5 正交试验结果分析 | 第46-47页 |
| 3.5 结论 | 第47-49页 |
| 第4章 磺化木聚糖纯化组分理化性质研究 | 第49-61页 |
| 4.1 前言 | 第49页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第49-51页 |
| 4.2.1 材料 | 第49-50页 |
| 4.2.2 仪器 | 第50-51页 |
| 4.3 实验方法 | 第51-53页 |
| 4.3.1 磺化木聚糖的红外光谱分析 | 第51页 |
| 4.3.2 分子量的测定 | 第51-52页 |
| 4.3.3 单糖组分的测定 | 第52-53页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第53-59页 |
| 4.4.1 磺化木聚糖的红外光谱分析 | 第53-55页 |
| 4.4.2 葡聚糖分子量校准曲线的绘制 | 第55页 |
| 4.4.3 磺化木聚糖纯化组分纯度鉴定及其分子量的分布 | 第55-57页 |
| 4.4.4 磺化木聚糖各组分的单糖组分分析 | 第57-59页 |
| 4.5 结论 | 第59-61页 |
| 第5章 磺化木聚糖的分离纯化及抗凝血活性的研究 | 第61-71页 |
| 5.1 前言 | 第61-62页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第62-63页 |
| 5.2.1 材料 | 第62页 |
| 5.2.2 仪器 | 第62-63页 |
| 5.3 实验方法 | 第63-65页 |
| 5.3.1 磺化木聚糖的分离纯化 | 第63页 |
| 5.3.2 磺化木聚糖组分对APTT、PT和TT的影响分析 | 第63-64页 |
| 5.3.2.1 活化部分凝血活酶时间的测定 | 第63-64页 |
| 5.3.2.2 凝血酶原时间的测定 | 第64页 |
| 5.3.2.3 凝血酶时间的测定 | 第64页 |
| 5.3.3 硫酸取代度对抗凝血活性的影响 | 第64-65页 |
| 5.3.4 分子量对抗凝血活性的影响 | 第65页 |
| 5.3.5 统计分析 | 第65页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第65-69页 |
| 5.4.1 磺化木聚糖的分离纯化 | 第65-66页 |
| 5.4.2 磺化木聚糖组分对APTT、PT和TT的影响 | 第66-68页 |
| 5.4.2.1 磺化木聚糖对APTT的影响 | 第66-67页 |
| 5.4.2.2 磺化木聚糖对PT的影响 | 第67页 |
| 5.4.2.3 磺化木聚糖对TT的影响 | 第67-68页 |
| 5.4.3 硫酸取代度对抗凝血活性的影响 | 第68-69页 |
| 5.4.4 分子量对抗凝血活性的影响 | 第69页 |
| 5.5 结论 | 第69-71页 |
| 第6章 结论与展望 | 第71-73页 |
| 6.1 结论 | 第71-72页 |
| 6.2 展望 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 攻读学位期间发表论文 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
