| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第11-30页 |
| 1.1 青养概述 | 第11-12页 |
| 1.1.1 青养简介 | 第11页 |
| 1.1.2 青养的营养价值 | 第11-12页 |
| 1.2 抗氧化肽的研究进展 | 第12-20页 |
| 1.2.1 抗氧化肽概述 | 第12-14页 |
| 1.2.1.1 内源性抗氧化肽 | 第13页 |
| 1.2.1.2 食源性蛋白的降解 | 第13页 |
| 1.2.1.3 化学合成法制备抗氧化肽 | 第13-14页 |
| 1.2.2 抗氧化肽的抗氧化作用机理 | 第14-15页 |
| 1.2.3 抗氧化活性测定方法 | 第15-17页 |
| 1.2.3.1 抑制脂类物质过氧化法 | 第15-16页 |
| 1.2.3.2 测定抗氧化剂清除自由基能力的方法 | 第16-17页 |
| 1.2.3.3 细胞实验 | 第17页 |
| 1.2.3.4 动物实验或人体实验 | 第17页 |
| 1.2.4 抗氧化肽的分离纯化方法研究 | 第17-19页 |
| 1.2.4.1 超滤法 | 第17-18页 |
| 1.2.4.2 离子交换色谱 | 第18页 |
| 1.2.4.3 凝胶色谱法 | 第18页 |
| 1.2.4.4 反相高效液相色谱(RP-HPLC) | 第18-19页 |
| 1.2.4.5 其他分离方法 | 第19页 |
| 1.2.5 抗氧化肽的结构鉴定 | 第19-20页 |
| 1.2.6 抗氧化肽的应用前景 | 第20页 |
| 1.3 抗氧化肽的稳定性研究 | 第20-21页 |
| 1.3.1 抗氧化肽的体外稳定性研究 | 第20-21页 |
| 1.3.2 抗氧化肽的体内稳定性研究 | 第21页 |
| 1.4 研究意义和主要内容 | 第21-23页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第21-22页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第22-23页 |
| 参考文献 | 第23-30页 |
| 第二章 青养蛋白抗氧化肽的制备及胃肠道消化研究 | 第30-42页 |
| 2.1 前言 | 第30页 |
| 2.2 材料与方法 | 第30-34页 |
| 2.2.1 材料 | 第30页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第30-31页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第31-32页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第32-34页 |
| 2.2.4.1 酶解工艺流程[8] | 第32页 |
| 2.2.4.2 模拟胃肠消化道酶系对青养多肽抗氧化活性的影响 | 第32页 |
| 2.2.4.3 蛋白质利用率的测定 | 第32页 |
| 2.2.4.4 水解度的测定[11] | 第32页 |
| 2.2.4.5 肽分子量分布测定 | 第32-33页 |
| 2.2.4.6 氨基酸分析 | 第33页 |
| 2.2.4.7 抗氧化活性的测定 | 第33页 |
| 2.2.4.7.1 清除 DPPH 自由基能力的测定[12] | 第33页 |
| 2.2.4.7.2 氧自由基吸收能力（ORAC）实验 | 第33页 |
| 2.2.4.8 数据统计与分析 | 第33-34页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第34-38页 |
| 2.3.1 酶对蛋白质利用率、水解度和抗氧化活性的影响 | 第34页 |
| 2.3.2 最佳抗氧化活性水解物的氨基酸组成及营养评价 | 第34-35页 |
| 2.3.3 酶解产物分子量分布 | 第35-36页 |
| 2.3.4 模拟胃肠道消化酶解对青养蛋白肽抗氧化活性的影响 | 第36-38页 |
| 2.3.4.1 模拟胃肠道消化过程中青养多肽清除 DPPH·能力的变化 | 第36-37页 |
| 2.3.4.2 模拟胃肠道消化过程中青养多肽 ORAC 值的变化 | 第37-38页 |
| 2.4 本章小结 | 第38-40页 |
| 参考文献 | 第40-42页 |
| 第三章 青养抗氧化肽的分离纯化及结构鉴定 | 第42-61页 |
| 3.1 前言 | 第42-43页 |
| 3.2 材料与方法 | 第43-46页 |
| 3.2.1 材料 | 第43页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第43页 |
| 3.2.3 主要仪器 | 第43-44页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第44-46页 |
| 3.2.4.1 BCA 法测定蛋白浓度（96 孔板） | 第44页 |
| 3.2.4.2 膜超滤法分离青养蛋白水解物（FPH） | 第44-45页 |
| 3.2.4.3 离子交换色谱法分离 FPH | 第45页 |
| 3.2.4.4 凝胶过滤色谱分离 FPH | 第45页 |
| 3.2.4.5 反相高效液相色谱法（RP-HPLC）分离纯化 FPH | 第45-46页 |
| 3.2.4.6 ESI-MS/MS 鉴定抗氧化肽 | 第46页 |
| 3.2.4.7 ORAC 值的测定 | 第46页 |
| 3.2.4.8 清除 DPPH·能力的测定方法 | 第46页 |
| 3.2.4.9 还原力的测定方法 | 第46页 |
| 3.2.4.10 数据统计与分析 | 第46页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第46-55页 |
| 3.3.1 膜超滤法纯化 FPH | 第46-47页 |
| 3.3.2 离子交换色谱法纯化 FPH | 第47-49页 |
| 3.3.3 凝胶过滤色谱法纯化 FPH | 第49-50页 |
| 3.3.4 反相-高效液相色谱法纯化 FPH | 第50-53页 |
| 3.3.5 多肽氨基酸序列的鉴定 | 第53-55页 |
| 3.4 本章小结 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 第四章 不同分子量段青养蛋白抗氧化肽的胃肠道消化特性 | 第61-77页 |
| 4.1 前言 | 第61-62页 |
| 4.2 材料与方法 | 第62-64页 |
| 4.2.1 材料 | 第62页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第62页 |
| 4.2.3 主要仪器 | 第62-63页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第63-64页 |
| 4.2.4.1 养蛋白水解物的制备 | 第63页 |
| 4.2.4.2 青养蛋白水解物的分离 | 第63页 |
| 4.2.4.3 胃肠道消化模拟 | 第63页 |
| 4.2.4.4 抗氧化活性的测定 | 第63-64页 |
| 4.2.4.4.1 氧自由基吸收能力（ORAC）测定 | 第63页 |
| 4.2.4.4.2 清除 DPPH 自由基能力测定 | 第63页 |
| 4.2.4.4.3 清除 ABTS+自由基能力测定 | 第63-64页 |
| 4.2.4.4.4 还原力的测定 | 第64页 |
| 4.2.4.5 分子量分布测定 | 第64页 |
| 4.2.4.6 游离氨基酸测定-磺基水杨酸法 | 第64页 |
| 4.2.4.7 高效液相色谱法分析 | 第64页 |
| 4.2.4.8 数据统计与分析 | 第64页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第64-75页 |
| 4.3.1 不同分子量肽段青养抗氧化肽的制备 | 第64-65页 |
| 4.3.2 不同分子量肽段的特性 | 第65-66页 |
| 4.3.2.1 不同分子量肽段的分子量分布 | 第65-66页 |
| 4.3.2.2 不同分子量肽段的抗氧化活性 | 第66页 |
| 4.3.3 模拟体外消化过程中分子特性的变化 | 第66-71页 |
| 4.3.3.1 模拟体外消化过程中分子量分布的变化 | 第67-68页 |
| 4.3.3.2 模拟体外消化过程中游离氨酸的释放变化 | 第68-69页 |
| 4.3.3.3 模拟体外消化过程中 HPLC 谱图的变化 | 第69-71页 |
| 4.3.4 体外模拟胃肠道消化后组分 B 和 S 的抗氧化活性变化 | 第71-75页 |
| 4.3.4.1 模拟胃肠道消化过程中组分 B 和 S 清除 DPPH 自由基能力变化 | 第71-72页 |
| 4.3.4.2 模拟体外胃肠道消化过程中清除 ABTS·+能力变化 | 第72-73页 |
| 4.3.4.3 模拟体外胃肠道消化过程中 ORAC 值得变化 | 第73-74页 |
| 4.3.4.4 模拟体外胃肠道消化过程中还原力的变化 | 第74-75页 |
| 4.4 本章小结 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-78页 |
| 结论与展望 | 第78-80页 |
| 结论 | 第78页 |
| 本论文的主要创新点 | 第78-79页 |
| 展望 | 第79-80页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第80-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 附件 | 第84页 |
