| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-32页 |
| ·葡萄酒与苹果酸-乳酸发酵 | 第12-16页 |
| ·苹果酸-乳酸发酵及能量产生的机制 | 第12-13页 |
| ·苹果酸-乳酸发酵对葡萄酒质量的影响 | 第13-14页 |
| ·影响苹果酸-乳酸细菌MLF 进行的因素 | 第14-16页 |
| ·苹果酸-乳酸发酵的启动 | 第16-19页 |
| ·MLF 的自然诱导 | 第16-18页 |
| ·MLF 的人工接种诱导 | 第18-19页 |
| ·葡萄酒MLF 乳酸菌的研究进展 | 第19-20页 |
| ·苹果酸-乳酸菌的定义及种类 | 第19-20页 |
| ·国内外苹果酸乳酸菌筛选进展 | 第20页 |
| ·酒酒球菌胁迫适应性研究进展 | 第20-28页 |
| ·细胞膜与环境胁迫 | 第20-23页 |
| ·酒酒球菌细胞膜的胁迫耐受研究 | 第23-24页 |
| ·MLF 与质膜H~+-ATPase | 第24-27页 |
| ·细胞膜和ATPase 活性的关系 | 第27页 |
| ·胁迫蛋白的合成 | 第27-28页 |
| ·影响乳酸菌冻干存活率的因素 | 第28-30页 |
| ·内在因素 | 第28-29页 |
| ·培养因素 | 第29页 |
| ·胁迫处理 | 第29-30页 |
| ·冻干保护剂 | 第30页 |
| ·本论文研究的主要内容 | 第30-32页 |
| 第二章 材料与方法 | 第32-38页 |
| ·试验材料 | 第32页 |
| ·菌株 | 第32页 |
| ·试剂 | 第32页 |
| ·仪器设备 | 第32页 |
| ·试验方法 | 第32-37页 |
| ·培养基的配制 | 第32-33页 |
| ·菌种活化 | 第33页 |
| ·酒酒球菌SD-2a 生长曲线的测定 | 第33页 |
| ·接种模拟酒培养基后发酵活性的测定 | 第33页 |
| ·冷冻干燥试验 | 第33-34页 |
| ·质膜H~+-ATPase 的制备和活性测定 | 第34-35页 |
| ·质膜H~+-ATPase 活性测定条件的优化 | 第35页 |
| ·不同环境下酒酒球菌SD-2a 的胁迫适应性及质膜H~+-ATPase 活性的测定 | 第35-37页 |
| ·数据统计分析 | 第37-38页 |
| 第三章 结果与分析 | 第38-51页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第38-39页 |
| ·磷标准曲线的绘制 | 第38页 |
| ·蛋白标准曲线的绘制 | 第38-39页 |
| ·酒酒球菌SD-2A 质膜H~+-ATPASE 活性测定条件的研究优化 | 第39-42页 |
| ·不同的缓冲液pH 值对酒酒球菌SD-2a 质膜H~+-ATPase 活性的影响 | 第39-40页 |
| ·不同温度对酒酒球菌SD-2a 质膜H~+-ATPase 活性的影响 | 第40-41页 |
| ·反应温度和时间对酶促反应的影响 | 第41页 |
| ·酒酒球菌SD-2a 质膜H~+-ATPase 活性测定条件的优化 | 第41-42页 |
| ·不同环境下酒酒球菌SD-2A 的胁迫适应性及质膜H~+-ATPASE 活性的测定结果 | 第42-51页 |
| ·酒酒球菌SD-2a 不同生长阶段质膜H~+-ATPase 的活性和菌体的冻干存活率 | 第42-43页 |
| ·不同碳源组下酒酒球菌SD-2a的胁迫适应性及质膜H~+-ATPase活性的测定结果 | 第43-46页 |
| ·酸胁迫处理对酒酒球菌SD-2a 的生长及质膜H~+-ATPase 活性的测定结果 | 第46-48页 |
| ·酒精胁迫处理下酒酒球菌SD-2a 的生长及质膜H~+-ATPase 活性的测定结果 | 第48-49页 |
| ·不同温度处理下酒酒球菌SD-2a的胁迫适应性及质膜H~+-ATPase活性的测定结果 | 第49-51页 |
| 第四章 讨论 | 第51-54页 |
| ·缓冲液PH，温度对酒酒球菌SD-2A 质膜H~+-ATPASE 活性检测的影响 | 第51页 |
| ·不同培养基组分对酒酒球菌SD-2A 处理的有效性和对H~+-ATPASE 活性的影响 | 第51页 |
| ·酸胁迫处理对酒酒球菌SD-2A 生长及H~+-ATPASE 活性的影响 | 第51-52页 |
| ·酒精胁迫对酒酒球菌SD-2A 生长和H~+-ATPASE 活性的影响 | 第52页 |
| ·温度对酒酒球菌SD-2A 处理的有效性和对H~+-ATPASE 活性的影响 | 第52-54页 |
| 第五章 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 作者简介 | 第63页 |
