| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 前言 | 第13-25页 |
| 1 天然多糖的生物活性 | 第13-17页 |
| 1.1 多糖的抗肿瘤活性 | 第13页 |
| 1.2 多糖的免疫调节活性 | 第13-14页 |
| 1.3 多糖的抗病毒活性 | 第14-15页 |
| 1.4 多糖的抗氧化活性 | 第15页 |
| 1.5 多糖的降血糖活性 | 第15-16页 |
| 1.6 多糖的降血脂活性 | 第16页 |
| 1.7 多糖的其它活性 | 第16-17页 |
| 2 多糖吸收代谢的研究 | 第17-21页 |
| 2.1 多糖吸收代谢测定方法 | 第17-19页 |
| 2.1.1 生物学测定法 | 第17页 |
| 2.1.2 同位素示踪法 | 第17-18页 |
| 2.1.3 免疫分析法 | 第18-19页 |
| 2.1.4 色谱法 | 第19页 |
| 2.2 多糖吸收代谢研究概况 | 第19-21页 |
| 3 乌贼墨多糖的研究概况 | 第21-23页 |
| 3.1 乌贼墨多糖的结构和活性 | 第22-23页 |
| 3.2 鱿鱼墨多糖前期研究进展 | 第23页 |
| 4 研究目的、研究内容及意义 | 第23-25页 |
| 第一章 免疫学方法研究鱿鱼墨多糖在上皮细胞的跨膜转运 | 第25-40页 |
| 第一节 鱿鱼墨多糖的提取、分离纯化 | 第25-29页 |
| 1.1 引言 | 第25页 |
| 1.2 材料和仪器 | 第25-26页 |
| 1.2.1 实验材料 | 第25页 |
| 1.2.2 实验仪器 | 第25-26页 |
| 1.3 实验方法 | 第26-27页 |
| 1.3.1 鱿鱼墨粗多糖的提取 | 第26页 |
| 1.3.2 阴离子交换色谱分级纯化 | 第26页 |
| 1.3.3 高效凝胶过滤色谱法(HPSEC)分析纯化 | 第26页 |
| 1.3.4 纯度的测定及结构验证 | 第26-27页 |
| 1.4 实验结果与讨论 | 第27-29页 |
| 1.4.1 鱿鱼墨多糖的提取及分离纯化 | 第27-28页 |
| 1.4.2 鱿鱼墨多糖的纯度及鉴定 | 第28-29页 |
| 第二节 鱿鱼墨多糖抗体的制备 | 第29-34页 |
| 2.1 引言 | 第29-30页 |
| 2.2 材料和仪器 | 第30页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第30页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-32页 |
| 2.3.1 抗原处理 | 第30-31页 |
| 2.3.2 动物免疫 | 第31页 |
| 2.3.3 ELISA检测血清效价 | 第31-32页 |
| 2.3.4 抗体纯化及浓度和效价检测 | 第32页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第32-34页 |
| 2.4.1 多糖-载体蛋白偶联物的制备 | 第32-33页 |
| 2.4.2 ELISA检测血清效价 | 第33-34页 |
| 2.4.3 纯化后抗体浓度的检测 | 第34页 |
| 2.4.4 ELISA检测纯化后抗体效价 | 第34页 |
| 第三节 鱿鱼墨多糖在MDCK细胞中的跨膜转运研究 | 第34-38页 |
| 3.1 引言 | 第34-35页 |
| 3.2 材料和仪器 | 第35-36页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第35页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第35-36页 |
| 3.3 实验方法 | 第36-37页 |
| 3.3.1 MDCK细胞的培养 | 第36页 |
| 3.3.2 免疫组化法研究SIP在MDCK细胞中的跨膜转运 | 第36-37页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第37-38页 |
| 3.4.1 MDCK细胞的形态观察 | 第37页 |
| 3.4.2 免疫组化法研究SIP在MDCK细胞中的跨膜转运 | 第37-38页 |
| 本章小结 | 第38-40页 |
| 第二章 荧光标记法研究鱿鱼墨多糖的消化吸收 | 第40-69页 |
| 第一节 鱿鱼墨多糖的荧光标记 | 第40-48页 |
| 1.1 引言 | 第40-41页 |
| 1.2 材料和仪器 | 第41页 |
| 1.2.1 实验材料 | 第41页 |
| 1.2.2 实验仪器 | 第41页 |
| 1.3 实验方法 | 第41-43页 |
| 1.3.1 鱿鱼墨多糖荧光标记物SIP-FTSC的制备 | 第41-42页 |
| 1.3.2 荧光标记多糖SIP-FTSC的分析 | 第42-43页 |
| 1.3.3 SIP-FTSC荧光标记条件的优化 | 第43页 |
| 1.4 实验结果与讨论 | 第43-48页 |
| 1.4.1 SIP-FTSC的制备 | 第43-44页 |
| 1.4.2 SIP-FTSC的标记成功 | 第44-45页 |
| 1.4.3 SIP-FTSC的紫外光谱分析 | 第45页 |
| 1.4.4 SIP-FTSC的荧光光谱分析 | 第45-47页 |
| 1.4.5 SIP-FTSC高效液相色谱分析 | 第47-48页 |
| 1.4.6 SIP-FTSC荧光标记条件的优化 | 第48页 |
| 第二节 荧光标记多糖在Caco-2细胞模型中的跨膜转运研究 | 第48-63页 |
| 2.1 引言 | 第48-49页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第49-50页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第49-50页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第50页 |
| 2.3 实验方法 | 第50-54页 |
| 2.3.1 Caco-2三维细胞模型的构建与评价 | 第50-51页 |
| 2.3.2 荧光多糖在Caco-2三维细胞中的跨膜转运研究 | 第51-54页 |
| 2.3.3 数据分析 | 第54页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第54-63页 |
| 2.4.1 Caco-2三维细胞模型的评估 | 第54-57页 |
| 2.4.2 荧光多糖在Caco-2三维细胞中的跨膜转运研究 | 第57-63页 |
| 第三节 荧光标记多糖在小鼠体内消化吸收的研究 | 第63-68页 |
| 3.1 引言 | 第63页 |
| 3.2 材料和仪器 | 第63-64页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第63页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第63-64页 |
| 3.3 实验方法 | 第64-65页 |
| 3.3.1 荧光多糖在不同时间段血清中分布 | 第64页 |
| 3.3.2 荧光多糖在肠损伤模型组和正常组间的分布比较 | 第64-65页 |
| 3.3.3 数据分析 | 第65页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第65-68页 |
| 3.4.1 荧光多糖在不同时间段血清中分布 | 第65页 |
| 3.4.2 荧光多糖在肠损伤模型组和正常组间中分布比较 | 第65-68页 |
| 本章小结 | 第68-69页 |
| 结论 | 第69-71页 |
| 1 总结 | 第69-70页 |
| 2 本文创新点 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 个人简历 | 第78页 |
| 发表的学术论文 | 第78页 |
