| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-26页 |
| 1.1 真菌毒素研究概况 | 第12-13页 |
| 1.1.1 真菌毒素的发现 | 第12页 |
| 1.1.2 真菌毒素的毒性 | 第12-13页 |
| 1.1.3 真菌毒素合成的生态机制 | 第13页 |
| 1.2 传统发酵食品存在真菌毒素污染的风险 | 第13-17页 |
| 1.2.1 传统发酵食品及其生产方式 | 第13-14页 |
| 1.2.2 传统发酵食品中真菌毒素污染概况 | 第14-17页 |
| 1.3 中国白酒生产环境和酿造中的霉菌 | 第17-20页 |
| 1.3.1 中国白酒酿造微生态 | 第17-18页 |
| 1.3.2 霉菌影响白酒的品质与安全 | 第18-20页 |
| 1.4 传统食品发酵中真菌群落研究进展 | 第20-21页 |
| 1.4.1 传统微生物学技术 | 第20页 |
| 1.4.2 传统分子生物学技术 | 第20-21页 |
| 1.4.3 现代分子生物学技术 | 第21页 |
| 1.4.4 大曲中真菌的研究进展 | 第21页 |
| 1.5 传统发酵食品中赭曲霉毒素A研究进展 | 第21-23页 |
| 1.5.1 赭曲霉毒素的结构及毒性 | 第21-22页 |
| 1.5.2 传统发酵食品中赭曲霉毒素A污染概况 | 第22页 |
| 1.5.3 食品中赭曲霉毒素A检测方法研究进展 | 第22-23页 |
| 1.6 本课题的研究内容与意义 | 第23-26页 |
| 1.6.1 本研究的立题依据及存在的科学问题 | 第23-24页 |
| 1.6.2 本论文的主要研究内容 | 第24-26页 |
| 第二章 白酒中赭曲霉毒素A检测方法开发及其定量分析 | 第26-40页 |
| 2.1 前言 | 第26-27页 |
| 2.2 材料与方法 | 第27-31页 |
| 2.2.1 实验样品 | 第27页 |
| 2.2.2 主要试剂和材料 | 第27-28页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第28页 |
| 2.2.4 OTA工作液的配置 | 第28页 |
| 2.2.5 固相萃取方法 | 第28-29页 |
| 2.2.6 ProelutTM PXA净化条件优化方法 | 第29页 |
| 2.2.7 HPLC-FLD分析方法 | 第29-30页 |
| 2.2.8 方法验证 | 第30页 |
| 2.2.9 统计方法 | 第30-31页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第31-38页 |
| 2.3.1 净化程序优化 | 第31-34页 |
| 2.3.2 HPLC-FLD分析条件的优化 | 第34-35页 |
| 2.3.3 方法确证 | 第35-36页 |
| 2.3.4 中国白酒基酒中OTA分布状况调查 | 第36-38页 |
| 2.4 本章小结 | 第38-40页 |
| 第三章 大曲中赭曲霉毒素A的发生及其分布特征 | 第40-56页 |
| 3.1 前言 | 第40-41页 |
| 3.2 材料与方法 | 第41-47页 |
| 3.2.1 实验样品及处理 | 第41页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第41-42页 |
| 3.2.3 主要试剂及材料 | 第42页 |
| 3.2.4 OTA工作液的配置 | 第42页 |
| 3.2.5 样品处理方法 | 第42-43页 |
| 3.2.6 大曲中OTA提取优化实验设计 | 第43-45页 |
| 3.2.7 UPLC-MS/MS分析方法 | 第45-46页 |
| 3.2.8 方法验证 | 第46-47页 |
| 3.2.9 统计方法 | 第47页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第47-54页 |
| 3.3.1 超高效液相条件优化 | 第47页 |
| 3.3.2 净化程序优化 | 第47-48页 |
| 3.3.3 提取条件优化 | 第48-51页 |
| 3.3.4 方法确证 | 第51-52页 |
| 3.3.5 大曲中OTA的分布状况 | 第52-54页 |
| 3.4 本章小结 | 第54-56页 |
| 第四章 大曲生产过程中真菌群落结构及其演变研究 | 第56-77页 |
| 4.1 前言 | 第56-57页 |
| 4.2 材料与方法 | 第57-63页 |
| 4.2.1 实验样品 | 第57页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第57页 |
| 4.2.3 主要主要仪器 | 第57-58页 |
| 4.2.4 培养基及溶液配制 | 第58页 |
| 4.2.5 微生物分离计数方法 | 第58-59页 |
| 4.2.6 理化指标测定方法 | 第59页 |
| 4.2.7 大曲基因组的提取 | 第59-60页 |
| 4.2.8 高通量测序与序列处理 | 第60-62页 |
| 4.2.9 高通量测序的生物信息学分析 | 第62-63页 |
| 4.2.10 数据处理 | 第63页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第63-75页 |
| 4.3.1 大曲理化指标动态变化 | 第63-66页 |
| 4.3.2 酵母菌和霉菌数量动态变化 | 第66页 |
| 4.3.3 不同季节大曲生产过程中真菌群落结构变化 | 第66-70页 |
| 4.3.4 不同大曲中真菌群落多样性变化 | 第70-73页 |
| 4.3.5 不同大曲中差异微生物分析 | 第73-75页 |
| 4.4 本章小结 | 第75-77页 |
| 第五章 大曲生产过程中赭曲霉毒素A的动态变化及其产生菌 | 第77-93页 |
| 5.1 前言 | 第77页 |
| 5.2 材料与方法 | 第77-82页 |
| 5.2.1 实验样品及处理 | 第77-78页 |
| 5.2.2 主要试剂及材料 | 第78页 |
| 5.2.3 主要仪器 | 第78-79页 |
| 5.2.4 培养基配制 | 第79-80页 |
| 5.2.5 霉菌分离与纯化 | 第80页 |
| 5.2.6 霉菌产OTA能力及其生长速度测试 | 第80页 |
| 5.2.7 菌株鉴定 | 第80页 |
| 5.2.8 大曲总DNA的提取 | 第80-81页 |
| 5.2.9 大曲总DNA的扩增 | 第81-82页 |
| 5.2.10 统计方法 | 第82页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第82-91页 |
| 5.3.1 大曲生产过程中OTA的动态变化 | 第82-83页 |
| 5.3.2 大曲中OTA产生菌的分离与鉴定 | 第83-85页 |
| 5.3.3 大曲生产过程中真菌群落结构变化 | 第85-91页 |
| 5.3.4 大曲中OTA的主要产生菌 | 第91页 |
| 5.4 本章小结 | 第91-93页 |
| 主要结论与展望 | 第93-96页 |
| 主要结论 | 第93-95页 |
| 展望 | 第95-96页 |
| 论文主要创新点 | 第96-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-111页 |
| 附录：作者攻读博士学位期间的成果 | 第111页 |
