| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-30页 |
| 1.1 引言 | 第14页 |
| 1.2 兜唇石斛的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.2.1 石斛的简介及研究进展 | 第14页 |
| 1.2.2 兜唇石斛的简介及研究进展 | 第14-16页 |
| 1.2.3 兜唇石斛提取物的研究进展 | 第16页 |
| 1.3 生物活性多糖的研究现状 | 第16-17页 |
| 1.3.1 生物活性多糖 | 第16页 |
| 1.3.2 多糖的分离纯化与结构鉴定 | 第16-17页 |
| 1.3.3 多糖结构与免疫活性的关系 | 第17页 |
| 1.4 生物活性肽的研究进展 | 第17-19页 |
| 1.4.1 生物活性肽 | 第17-18页 |
| 1.4.2 生物活性肽的制备分离与鉴定 | 第18页 |
| 1.4.3 抗氧化活性肽的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.5 活性多糖及多肽的胃肠道消化相关研究进展 | 第19-22页 |
| 1.5.1 多糖及多肽的消化酵解及肠道功能 | 第19-20页 |
| 1.5.2 多糖及多肽对肠道菌群的影响 | 第20-21页 |
| 1.5.3 胃肠道消化及酵解对活性多糖及多肽的影响 | 第21-22页 |
| 1.6 本研究选题依据与研究内容 | 第22-24页 |
| 1.6.1 选题依据及意义 | 第22页 |
| 1.6.2 主要研究内容 | 第22-23页 |
| 1.6.3 研究技术路线 | 第23-24页 |
| 参考文献 | 第24-30页 |
| 第二章 兜唇石斛多糖的结构鉴定与免疫学评价 | 第30-52页 |
| 2.1 前言 | 第30-31页 |
| 2.2 材料与试剂 | 第31-32页 |
| 2.3 主要仪器与设备 | 第32页 |
| 2.4 样品预处理 | 第32页 |
| 2.5 实验方法 | 第32-36页 |
| 2.5.1 兜唇石斛粗多糖的提取 | 第32-33页 |
| 2.5.2 兜唇石斛多糖的纯化 | 第33页 |
| 2.5.3 兜唇石斛多糖结构的表征 | 第33页 |
| 2.5.4 兜唇石斛多糖的结构分析 | 第33-35页 |
| 2.5.5 兜唇石斛多糖DAP的免疫学评价 | 第35-36页 |
| 2.5.6 数据分析 | 第36页 |
| 2.6 结果与讨论 | 第36-47页 |
| 2.6.1 兜唇石斛多糖的分离纯化 | 第36-38页 |
| 2.6.2 兜唇石斛多糖DAP的表征 | 第38-39页 |
| 2.6.3 兜唇石斛多糖DAP结构鉴定 | 第39-42页 |
| 2.6.4 兜唇石斛多糖DAP对RAW264.7的免疫学评价 | 第42-47页 |
| 2.7 本章小结 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 第三章 兜唇石斛多糖在模拟人体胃肠消化及酵解过程中的特征研究 | 第52-68页 |
| 3.1 前言 | 第52-53页 |
| 3.2 材料与试剂 | 第53页 |
| 3.3 主要仪器与设备 | 第53页 |
| 3.4 实验方法 | 第53-57页 |
| 3.4.1 模拟唾液消化 | 第53-54页 |
| 3.4.2 模拟胃肠的消化 | 第54-55页 |
| 3.4.3 模拟肠道菌群的酵解 | 第55-56页 |
| 3.4.4 酵解过程中pH值的检测 | 第56页 |
| 3.4.5 分子量的测定 | 第56页 |
| 3.4.6 还原糖的测定 | 第56页 |
| 3.4.7 单糖的测定 | 第56页 |
| 3.4.8 短链脂肪酸的测定 | 第56页 |
| 3.4.9 数据分析 | 第56-57页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第57-64页 |
| 3.5.1 兜唇石斛多糖消化吸收及酵解过程中分子量的变化 | 第57-58页 |
| 3.5.2 兜唇石斛多糖消化吸收及酵解过程中还原糖的变化 | 第58-59页 |
| 3.5.3 兜唇石斛多糖消化吸收及酵解过程中释放单糖的变化 | 第59-61页 |
| 3.5.4 兜唇石斛多糖酵解过程中pH的变化 | 第61-62页 |
| 3.5.5 兜唇石斛多糖酵解过程中短链脂肪酸的测定 | 第62-64页 |
| 3.6 本章小结 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-68页 |
| 第四章 四种含有β-D-1→4糖苷键的多糖在模拟体外胃肠消化的表征及一种新的GC-TQ/MS-MS方法对其体系中游离单糖的测定 | 第68-84页 |
| 4.1 前言 | 第68-69页 |
| 4.2 材料与试剂 | 第69页 |
| 4.3 主要仪器与设备 | 第69-70页 |
| 4.4 实验方法 | 第70-71页 |
| 4.4.1 扫描电镜(SEM)分析 | 第70页 |
| 4.4.2 红外光谱分析 | 第70页 |
| 4.4.3 单糖分析 | 第70页 |
| 4.4.4 甲基化分析 | 第70页 |
| 4.4.5 模拟体外胃肠消化 | 第70页 |
| 4.4.6 多糖分子量的测定 | 第70页 |
| 4.4.7 还原糖含量的测定 | 第70页 |
| 4.4.8 游离单糖含量的测定 | 第70-71页 |
| 4.4.9 数据分析 | 第71页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第71-81页 |
| 4.5.1 多糖结构的表征与验证 | 第71-74页 |
| 4.5.2 GC-TQ/MS-MS方法的分析 | 第74-79页 |
| 4.5.3 胃肠道消化过程中四种多糖的变化 | 第79-81页 |
| 4.6 本章小结 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-84页 |
| 第五章 兜唇石斛多肽的结构鉴定及体外抗氧化活性评价 | 第84-99页 |
| 5.1 前言 | 第84页 |
| 5.2 材料与试剂 | 第84-85页 |
| 5.3 主要仪器与设备 | 第85页 |
| 5.4 实验方法 | 第85-88页 |
| 5.4.1 兜唇石斛多肽样品的制备 | 第85-86页 |
| 5.4.2 SDS-PAGE分析 | 第86-87页 |
| 5.4.3 兜唇石斛多肽的超滤 | 第87页 |
| 5.4.4 兜唇石斛多肽的结构研究 | 第87页 |
| 5.4.5 兜唇石斛多肽的体外抗氧化活性测定 | 第87-88页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第88-96页 |
| 5.5.1 兜唇石斛固态发酵的菌种选择 | 第88-89页 |
| 5.5.2 兜唇石斛固态发酵过程中酶活的变化 | 第89页 |
| 5.5.3 兜唇石斛固态发酵提取多肽的最优条件分析 | 第89-91页 |
| 5.5.4 SDS-PAGE电泳分析 | 第91页 |
| 5.5.5 兜唇石斛多肽的结构分析 | 第91-94页 |
| 5.5.6 兜唇石斛多肽组分清除自由基能力 | 第94-96页 |
| 5.6 本章小结 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-99页 |
| 第六章 兜唇石斛多肽组分的细胞活性评价 | 第99-113页 |
| 6.1 前言 | 第99-100页 |
| 6.2 材料与试剂 | 第100-101页 |
| 6.3 主要仪器与设备 | 第101页 |
| 6.4 实验方法 | 第101-103页 |
| 6.4.1 兜唇石斛多肽<1 kDa组分样品的制备 | 第101页 |
| 6.4.2 RAW264.7及HepG2细胞的培养 | 第101页 |
| 6.4.3 兜唇石斛多肽<1 kDa对RAW264.7及HepG2细胞毒性实验 | 第101页 |
| 6.4.4 兜唇石斛多肽<1 kDa对RAW264.7细胞分泌细胞因子的影响 | 第101-102页 |
| 6.4.5 兜唇石斛多肽<1 kDa对HepG2细胞的CAA实验 | 第102页 |
| 6.4.6 兜唇石斛多肽<1 kDa测定有关AAPH自由基引起的红细胞保护机制 | 第102-103页 |
| 6.4.7 数据分析 | 第103页 |
| 6.5 结果与讨论 | 第103-109页 |
| 6.5.1 兜唇石斛多肽<1 kDa对RAW264.7及HepG2细胞毒性评价 | 第103-104页 |
| 6.5.2 兜唇石斛多肽<1 kDa对RAW264.7分泌细胞因子的影响 | 第104-105页 |
| 6.5.3 兜唇石斛多肽<1 kDa对HepG2细胞的抗氧化评价 | 第105页 |
| 6.5.4 兜唇石斛多肽<1 kDa对人红细胞氧化溶血的保护作用 | 第105-109页 |
| 6.6 本章小结 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-113页 |
| 第七章 兜唇石斛多肽组分在模拟人胃肠消化、酵解及小肠吸收过程中的特征研究 | 第113-132页 |
| 7.1 前言 | 第113-114页 |
| 7.2 材料与试剂 | 第114页 |
| 7.3 主要仪器与设备 | 第114-115页 |
| 7.4 实验方法 | 第115-117页 |
| 7.4.1 兜唇石斛多肽<1 kDa组分样品的制备 | 第115页 |
| 7.4.2 兜唇石斛多肽组分<1 kDa模拟胃肠消化 | 第115页 |
| 7.4.3 胃肠道消化后兜唇石斛多肽组分<1 kDa的体外抗氧化活性测定 | 第115页 |
| 7.4.4 兜唇石斛多肽组分<1 kDa的体外酵解 | 第115页 |
| 7.4.5 酵解过程中pH的测定 | 第115页 |
| 7.4.6 酵解过程中多肽含量的测定 | 第115页 |
| 7.4.7 酵解过程中酶活的测定 | 第115页 |
| 7.4.8 Caco-2细胞的吸收实验 | 第115-117页 |
| 7.4.9 兜唇石斛多肽组分<1 kDa经Caco-2细胞吸收后的游离氨基酸分析 | 第117页 |
| 7.4.10 兜唇石斛多肽组分<1 kDa经Caco-2细胞吸收后的氨基酸序列分析 | 第117页 |
| 7.4.11 数据分析 | 第117页 |
| 7.5 结果与讨论 | 第117-128页 |
| 7.5.1 胃肠道消化后兜唇石斛多肽组分<1 kDa的体外抗氧化活性 | 第117-119页 |
| 7.5.2 兜唇石斛多肽<1 kDa酵解过程中pH的变化 | 第119-120页 |
| 7.5.3 兜唇石斛多肽组分<1 kDa酵解过程中多肽含量的变化 | 第120-122页 |
| 7.5.4 兜唇石斛多肽组分<1 kDa酵解过程中酶活性的变化 | 第122页 |
| 7.5.5 兜唇石斛多肽组分<1 kDa关于Caco-2细胞吸收实验的评价 | 第122-128页 |
| 7.6 本章小结 | 第128-129页 |
| 参考文献 | 第129-132页 |
| 结论与展望 | 第132-135页 |
| 1.结论 | 第132-133页 |
| 2.创新点 | 第133-134页 |
| 3.展望 | 第134-135页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第135-137页 |
| 致谢 | 第137-138页 |
| 附件 | 第138页 |
