| 目录 | 第1-6页 |
| CONTENTS | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 1 引言 | 第13-25页 |
| ·立题背景 | 第13页 |
| ·干酪中的生物胺和黄曲霉毒素 M1 | 第13-18页 |
| ·干酪中的生物胺 | 第13-17页 |
| ·干酪中的黄曲霉毒素 M1 | 第17-18页 |
| ·黄曲霉毒素 M1 和生物胺的研究现状 | 第18-23页 |
| ·食品中生物胺检测的研究现状 | 第18-21页 |
| ·食品中黄曲霉毒素 M1 检测的研究现状 | 第21-23页 |
| ·研究目的及意义 | 第23页 |
| ·本文研究内容 | 第23-25页 |
| ·干酪中生物胺 HPLC 检测的研究 | 第23页 |
| ·干酪中黄曲霉毒素 M1HPLC 检测的研究 | 第23-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-33页 |
| ·材料与设备 | 第25-26页 |
| ·原料与试剂 | 第25页 |
| ·主要仪器设备 | 第25-26页 |
| ·试验方法 | 第26-33页 |
| ·干酪中生物胺的检测研究 | 第26-30页 |
| ·干酪中黄曲霉毒素 M1 的检测研究 | 第30-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-47页 |
| ·干酪样品的预处理 | 第33-36页 |
| ·五种提取溶剂提取生物胺的添加回收率及相对标准偏差 | 第33-35页 |
| ·干酪中黄曲霉毒素 M1 提取溶剂的确定 | 第35-36页 |
| ·干酪样品中生物胺衍生试剂用量的确定 | 第36页 |
| ·生物胺衍生物与黄曲霉毒素 M1 净化萃取条件的选择优化 | 第36-41页 |
| ·生物胺衍生物固相萃取条件的选择优化 | 第36-37页 |
| ·生物胺衍生物固相萃取与液-液萃取净化效果的对比 | 第37-40页 |
| ·亲水亲脂平衡柱固相萃取黄曲霉毒素 M1 条件的选择优化 | 第40-41页 |
| ·OasisHLB 柱固相萃取 AFM1 与国标免疫亲和柱萃取法的比较 | 第41页 |
| ·生物胺检测中流动相的确定 | 第41-43页 |
| ·线性回归方程﹑相关系数以及检测限 | 第43页 |
| ·六种生物胺的线性回归方程﹑相关系数以及检测限 | 第43页 |
| ·黄曲霉毒素 M1 的线性回归方程﹑相关系数以及检测限 | 第43页 |
| ·添加回收率以及相对标准偏差的测定 | 第43-45页 |
| ·干酪样品中生物胺的添加回收率以及相对标准偏差 | 第43-44页 |
| ·干酪样品中黄曲霉毒素 M1 的添加回收率以及相对标准偏差 | 第44-45页 |
| ·液相色谱检测结果 | 第45-47页 |
| ·生物胺色谱检测图 | 第45页 |
| ·黄曲霉毒素 M1 色谱检测图 | 第45-47页 |
| 4 讨论 | 第47-50页 |
| ·生物胺衍生物物的萃取净化 | 第47页 |
| ·黄曲霉毒素 M1 的净化提纯 | 第47-48页 |
| ·生物胺衍生化试剂的选择 | 第48-50页 |
| 5 结论 | 第50-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第59页 |
