| 中英文缩写对照表 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 前言 | 第14-23页 |
| 1.1 薏米概况 | 第14-15页 |
| 1.1.1 薏米的营养价值 | 第14页 |
| 1.1.2 薏米提取物的功能活性 | 第14-15页 |
| 1.2 薏米中主要活性成分 | 第15-18页 |
| 1.2.1 薏米脂肪酸及其酯 | 第15-16页 |
| 1.2.2 薏米多糖 | 第16-17页 |
| 1.2.3 薏米多酚 | 第17页 |
| 1.2.4 薏米中其他生物活性成分 | 第17-18页 |
| 1.3 酚类化合物研究进展 | 第18-21页 |
| 1.3.1 酚类化合物简介 | 第18-19页 |
| 1.3.2 酚类化合物的结构与分类 | 第19页 |
| 1.3.3 酚类化合物的生物活性 | 第19-21页 |
| 1.3.3.1 抗氧化活性 | 第19-20页 |
| 1.3.3.2 抗肿瘤作用 | 第20页 |
| 1.3.3.3 抗病毒和抑菌作用 | 第20页 |
| 1.3.3.4 其它生物活性 | 第20-21页 |
| 1.4 本研究的目的、主要内容及拟解决的关键技术 | 第21-23页 |
| 第二章 薏米多酚的分离纯化及结构鉴定 | 第23-39页 |
| 2.1 材料与设备 | 第23-24页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-27页 |
| 2.2.1 样品的准备 | 第24页 |
| 2.2.2 薏米多酚粗提物的准备 | 第24-25页 |
| 2.2.3 有机溶剂萃取 | 第25页 |
| 2.2.4 葡聚糖凝胶LH-20 的预处理 | 第25页 |
| 2.2.5 装柱 | 第25页 |
| 2.2.6 上样 | 第25页 |
| 2.2.7 半制备RP-HPLC分离薏米多酚 | 第25-26页 |
| 2.2.8 HPLC-DAD-ESI-MS分析 | 第26页 |
| 2.2.9 核磁共振谱（NMR）分析 | 第26页 |
| 2.2.10 HPLC-DAD定量分析 | 第26-27页 |
| 2.2.11 数据分析 | 第27页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第27-38页 |
| 2.3.1 薏米多酚萃取组分、亚组分及纯化物的得率分析 | 第27-29页 |
| 2.3.2 薏米多酚纯化物的结构鉴定 | 第29-34页 |
| 2.3.2.1 化合物一的结构鉴定 | 第29-30页 |
| 2.3.2.2 化合物二的结构鉴定 | 第30-31页 |
| 2.3.2.3 化合物三的结构鉴定 | 第31-32页 |
| 2.3.2.4 化合物四的结构鉴定 | 第32-34页 |
| 2.3.3 薏米多酚粗提物、萃取物及亚组分中酚类化合物的含量测定 | 第34-38页 |
| 2.4 本章小结 | 第38-39页 |
| 第三章 薏米多酚提取物各组分总酚含量及抗氧化活性测定 | 第39-54页 |
| 3.1 材料与设备 | 第39-40页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第39-40页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40-45页 |
| 3.2.1 样品的准备 | 第40页 |
| 3.2.2 薏米多酚粗提物的制备 | 第40-41页 |
| 3.2.3 有机溶剂萃取 | 第41页 |
| 3.2.4 葡聚糖凝胶LH-20 柱纯化 | 第41页 |
| 3.2.5 半制备RP-HPLC分离薏米多酚 | 第41页 |
| 3.2.6 总酚含量的测定 | 第41-42页 |
| 3.2.7 氧自由基吸收能力的测定 (ORAC) | 第42-43页 |
| 3.2.8 过氧化氢自由基清除能力的测定 (PSC) | 第43-44页 |
| 3.2.9 细胞培养 | 第44页 |
| 3.2.10 细胞毒性分析 | 第44页 |
| 3.2.11 细胞抗氧化实验（CAA) | 第44-45页 |
| 3.2.12 数据分析 | 第45页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第45-52页 |
| 3.3.1 薏米多酚粗提取、萃取物及亚组分的总酚含量分析 | 第45-46页 |
| 3.3.2 薏米多酚提取物各组分抗氧化活性的测定 | 第46-50页 |
| 3.3.2.1 ORAC值的测定 | 第46-47页 |
| 3.3.2.2 PSC值的测定 | 第47-48页 |
| 3.3.2.3 CAA值的测定 | 第48-50页 |
| 3.3.3 相关性分析 | 第50-51页 |
| 3.3.4 薏米多酚纯化物的抗氧化活性分析 | 第51-52页 |
| 3.4 本章小结 | 第52-54页 |
| 第四章 薏米多酚提取物各组分抗肿瘤活性测定 | 第54-61页 |
| 4.1 材料与设备 | 第54-55页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第54页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第54-55页 |
| 4.2 实验方法 | 第55-57页 |
| 4.2.1 样品的准备 | 第55页 |
| 4.2.2 薏米多酚粗提物的制备 | 第55页 |
| 4.2.3 有机溶剂萃取 | 第55-56页 |
| 4.2.4 葡聚糖凝胶LH-20 柱纯化 | 第56页 |
| 4.2.5 半制备RP-HPLC分离薏米多酚 | 第56页 |
| 4.2.6 细胞培养 | 第56页 |
| 4.2.7 抗肿瘤活性分析 | 第56页 |
| 4.2.8 数据分析 | 第56-57页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第57-60页 |
| 4.3.1 薏米多酚粗提取、萃取物及亚组分的抗肿瘤活性分析 | 第57-58页 |
| 4.3.2 薏米多酚纯化合物的抗肿瘤活性分析 | 第58-60页 |
| 4.4 本章小结 | 第60-61页 |
| 第五章 薏米多酚化合物抗肿瘤机理初探 | 第61-68页 |
| 5.1 材料与设备 | 第62页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第62页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第62页 |
| 5.2 实验方法 | 第62-64页 |
| 5.2.1 细胞培养 | 第62-63页 |
| 5.2.2 细胞形态观察 | 第63页 |
| 5.2.3 Western Blot试验 | 第63页 |
| 5.2.4 数据统计分析 | 第63-64页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第64-67页 |
| 5.3.1 对HepG2细胞一般形态的影响 | 第64-65页 |
| 5.3.2 对HepG2细胞内线粒体凋亡信号通路的影响 | 第65-67页 |
| 5.4 本章小结 | 第67-68页 |
| 主要结论 | 第68-70页 |
| 论文创新点 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-79页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
