摘要 | 第1-14页 |
ABSTRACT | 第14-18页 |
缩略语 | 第18-20页 |
第一章 绪论 | 第20-50页 |
1 泥鳅概况 | 第20-23页 |
·泥鳅形态 | 第20-21页 |
·泥鳅的分布及生活习性 | 第21页 |
·泥鳅的营养及药用价值 | 第21-22页 |
·泥鳅的生物活性分子及研究现状 | 第22-23页 |
2 血管紧张素转换酶与血管紧张素转化酶抑制剂 | 第23-27页 |
·高血压及血管紧张素转换酶 | 第23-25页 |
·血管紧张素转化酶抑制剂及其作用机制 | 第25-27页 |
3 血管紧张素转化酶抑制肽 | 第27-31页 |
·生物活性肽 | 第27-28页 |
·血管紧张素转化酶抑制肽的分类 | 第28-29页 |
·食源性ACE抑制肽 | 第29-31页 |
4 制备ACE抑制肽的方法 | 第31-36页 |
·血管紧张素转化酶抑制肽的酶法生产 | 第32-33页 |
·管紧张素转化酶抑制肽的分离与纯化 | 第33-36页 |
5 血管紧张素转化酶抑制肽的测定与评价 | 第36-39页 |
·体外检测 | 第36-37页 |
·动物实验 | 第37-38页 |
·降血压肽的结构鉴定 | 第38页 |
·ACE抑制肽的构效关系研究 | 第38-39页 |
·食源性ACE抑制肽的应用及前景 | 第39页 |
6 本课题研究的意义和主要内容 | 第39-42页 |
·立题背景和意义 | 第39-41页 |
·主要研究内容 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-50页 |
第二章 泥鳅蛋白的营养评价及蛋白酶的筛选 | 第50-64页 |
1 前言 | 第50页 |
2 材料与仪器 | 第50-52页 |
·试验材料 | 第50页 |
·主要试剂 | 第50-51页 |
·主要仪器 | 第51-52页 |
3 试验方法 | 第52-55页 |
·泥鳅前处理 | 第52页 |
·常规理化指标测定方法 | 第52页 |
·氨基酸组成分析 | 第52-53页 |
·泥鳅蛋白的营养价值评价 | 第53-54页 |
·酶活力测定 | 第54页 |
·酶解工艺流程 | 第54页 |
·酶解条件 | 第54页 |
·ACE抑制活性测定 | 第54-55页 |
·半抑制浓度的测定 | 第55页 |
·数据统计方法 | 第55页 |
4 结果与讨论 | 第55-60页 |
·泥鳅的基本成分测定 | 第55-56页 |
·泥鳅蛋白的氨基酸组成 | 第56-58页 |
·泥鳅蛋白的营养价值评价 | 第58-59页 |
·酶种类的选择 | 第59-60页 |
5 本章小结 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-64页 |
第三章 泥鳅蛋白酶解工艺条件的优化 | 第64-78页 |
1 前言 | 第64页 |
2 材料与仪器 | 第64-65页 |
·试验材料 | 第64页 |
·主要试剂 | 第64-65页 |
·主要仪器 | 第65页 |
3 试验方法 | 第65-67页 |
·泥鳅前处理 | 第65页 |
·酶解工艺流程 | 第65页 |
·泥鳅蛋白酶解工艺条件 | 第65-66页 |
·ACE抑制活性测定方法 | 第66页 |
·半抑制浓度的测定 | 第66页 |
·水解度的测定方法 | 第66页 |
·氨基氮的测定 | 第66-67页 |
·水解产物氨基酸组成测定 | 第67页 |
·数据统计方法 | 第67页 |
4 结果与讨论 | 第67-76页 |
·水解泥鳅蛋白工艺条件的优化 | 第67-71页 |
·响应面法优化泥鳅蛋白酶解工艺条件 | 第71-74页 |
·最佳酶解工艺下泥鳅酶解物的氨基酸组成 | 第74-76页 |
5 本章小结 | 第76页 |
参考文献 | 第76-78页 |
第四章 泥鳅蛋白降压肽的分离纯化及结构鉴定 | 第78-98页 |
1 前言 | 第78页 |
2 材料与仪器 | 第78-80页 |
·实验材料 | 第78-79页 |
·主要试剂 | 第79页 |
·主要仪器 | 第79-80页 |
3 实验方法 | 第80-82页 |
·泥鳅前处理 | 第80页 |
·泥鳅酶解工艺 | 第80页 |
·超滤 | 第80页 |
·凝胶过滤色谱纯化泥鳅降压肽 | 第80-81页 |
·反相高效液相色谱 | 第81页 |
·肽的氨基酸组成分析 | 第81页 |
·质谱测定肽的一级结构 | 第81-82页 |
·ACE抑制活性测定方法 | 第82页 |
·半抑制浓度的测定 | 第82页 |
·蛋白质含量的测定 | 第82页 |
·膜通量的测定 | 第82页 |
·泥鳅多肽的ACE抑制类型 | 第82页 |
·数据统计方法 | 第82页 |
4 结果与讨论 | 第82-93页 |
·LPH中ACE抑制肽的分离纯化工艺 | 第82-83页 |
·超滤法分离纯化泥鳅降压肽 | 第83-87页 |
·凝胶过滤色谱纯化泥鳅降压肽 | 第87-88页 |
·反相高效液相色谱 | 第88-90页 |
·泥鳅降压肽的分离纯化步骤及结果 | 第90页 |
·质谱法确定ACE抑制肽的一级结构 | 第90-92页 |
·泥鳅降血压肽ACE抑制动力学研究 | 第92-93页 |
5 本章小结 | 第93-94页 |
参考文献 | 第94-98页 |
第五章 泥鳅ACE抑制肽的理化性质 | 第98-114页 |
1 前言 | 第98页 |
2 材料与仪器 | 第98-99页 |
·试验材料 | 第98页 |
·主要试剂 | 第98-99页 |
·主要仪器 | 第99页 |
3 实验方法 | 第99-102页 |
·泥鳅多肽的制备 | 第99页 |
·溶解性的测定 | 第99-100页 |
·泥鳅多肽乳化性 | 第100页 |
·泥鳅多肽泡沫性质 | 第100页 |
·泥鳅多肽的抗氧化性质 | 第100-101页 |
·体外各因素对泥鳅多肽ACE抑制活性的影响 | 第101-102页 |
·ACE抑制活性测定方法 | 第102页 |
·泥鳅多肽ACE抑制活性保持率的计算 | 第102页 |
·数据统计方法 | 第102页 |
4 结果与分析 | 第102-110页 |
·泥鳅多肽的溶解性 | 第102-103页 |
·泥鳅多肽的乳化特性 | 第103-104页 |
·泥鳅多肽的起泡性 | 第104-105页 |
·泥鳅多肽的抗氧化能力 | 第105-106页 |
·体外各因素对泥鳅多肽ACE抑制活性的影响 | 第106-110页 |
5 本章小结 | 第110-111页 |
参考文献 | 第111-114页 |
第六章 泥鳅ACE抑制肽降血压功能研究 | 第114-130页 |
1 前言 | 第114页 |
2 材料与仪器 | 第114-115页 |
·实验材料 | 第114页 |
·主要试剂 | 第114-115页 |
·主要仪器 | 第115页 |
3 试验方法 | 第115-118页 |
·泥鳅降压肽制备 | 第115-116页 |
·SHR大鼠的预处理 | 第116页 |
·大鼠血压的测量方法 | 第116页 |
·泥鳅蛋白降血压肽对SHR大鼠血压的影响 | 第116-117页 |
·血清各项生化指标的测定 | 第117页 |
·血清中游离氨基酸的测定 | 第117页 |
·清及组织丙二醛的测定 | 第117页 |
·组织蛋白质含量的测定 | 第117页 |
·血清及组织ACE酶活力测定 | 第117页 |
·数据统计方法 | 第117-118页 |
4 结果与分析 | 第118-127页 |
·泥鳅蛋白ACE抑制肽对SHR大鼠血压的急性降压实验 | 第118-119页 |
·长期灌胃泥鳅蛋白ACE抑制肽对实验大鼠的影响 | 第119-122页 |
·长期灌胃泥鳅蛋白ACE抑制肽对大鼠组织器官的影响 | 第122-123页 |
·长期灌胃泥鳅蛋白ACE抑制肽对大鼠部分血生化指标影响 | 第123-124页 |
·长期灌胃泥鳅蛋白ACE抑制肽对血清及组织中过氧化脂质影响 | 第124-125页 |
·长期灌胃泥鳅蛋白ACE抑制肽对组织、血清ACE酶活的影响 | 第125-126页 |
·长期灌胃泥鳅蛋白ACE抑制肽对血清游离氨基酸的影响 | 第126-127页 |
5 本章小结 | 第127-128页 |
参考文献 | 第128-130页 |
第七章 血管紧张素转化酶抑制四肽的定量构效关系 | 第130-142页 |
1 前言 | 第130页 |
2 材料与方法 | 第130-133页 |
·样本的收集 | 第130-131页 |
·模型的构建方法 | 第131-133页 |
3 结果与分析 | 第133-139页 |
·样本的数据整理 | 第133-136页 |
·模型的构建 | 第136-137页 |
·QSAR模型的回归图 | 第137页 |
·QSAR模型变量投影重要性指示图 | 第137-138页 |
·QSAR模型的检验 | 第138-139页 |
4 本章小结 | 第139-140页 |
参考文献 | 第140-142页 |
结论与展望 | 第142-146页 |
1 全文结论 | 第142-143页 |
2 展望 | 第143-146页 |
论文创新点 | 第146-148页 |
致谢 | 第148-150页 |
攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第150页 |