| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 第一章 文献综述 | 第7-13页 |
| 1.1 褐藻胶制备方法研究 | 第8-9页 |
| 1.2 褐藻胶的功能作用 | 第9页 |
| 1.3 褐藻胶的降解方法 | 第9-10页 |
| 1.4 海洋微生物裂解酶 | 第10-11页 |
| 1.5 褐藻胶裂解机制 | 第11页 |
| 1.6 褐藻裂解产物的功能作用 | 第11-12页 |
| 1.7 研究目的及意义 | 第12-13页 |
| 第二章 褐藻胶裂解酶菌株的筛选与鉴定 | 第13-19页 |
| 2.1 实验材料与设备 | 第13-14页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第13页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第13-14页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第14页 |
| 2.2 实验方法 | 第14-16页 |
| 2.2.1 酶活测定相关试剂 | 第14-15页 |
| 2.2.2 菌株培养基的配制 | 第15页 |
| 2.2.3 DNS法测定酶活 | 第15-16页 |
| 2.3 结果与分析 | 第16-18页 |
| 2.3.1 皱纹盘鲍内脏菌株分离酶活测定结果 | 第16-17页 |
| 2.3.2 菌株 16S rDNA结果分析 | 第17-18页 |
| 2.4 讨论 | 第18-19页 |
| 第三章 褐藻胶裂解菌株产酶条件优化 | 第19-51页 |
| 3.1 实验材料与设备 | 第19-20页 |
| 3.1.1 实验原料 | 第19页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第19-20页 |
| 3.1.3 仪器设备 | 第20页 |
| 3.2 实验方法 | 第20-24页 |
| 3.2.1 发酵培养基的配制 | 第20页 |
| 3.2.2 菌株生长产酶曲线的绘制 | 第20页 |
| 3.2.3 培养基组分的优化试验 | 第20-21页 |
| 3.2.4 培养条件的优化试验 | 第21-22页 |
| 3.2.5 M3菌株Plackett-Burman试验 | 第22页 |
| 3.2.6 M3菌株响应面试验 | 第22-23页 |
| 3.2.7 M7菌株正交试验 | 第23-24页 |
| 3.3 M3菌株结果与分析 | 第24-40页 |
| 3.3.1 M3菌株生长产酶曲线 | 第24页 |
| 3.3.2 培养基组分的优化试验 | 第24-27页 |
| 3.3.3 培养条件的优化实验 | 第27-31页 |
| 3.3.4 Plackett-Burman设计 | 第31-32页 |
| 3.3.5 响应面试验及分析 | 第32-39页 |
| 3.3.6 响应面优化结果 | 第39-40页 |
| 3.4 M7菌株结果与分析 | 第40-49页 |
| 3.4.1 M7菌株生长产酶曲线的绘制 | 第40页 |
| 3.4.2 培养基组分的优化试验 | 第40-44页 |
| 3.4.3 培养条件的优化实验 | 第44-48页 |
| 3.4.4 M7菌株正交试验结果 | 第48-49页 |
| 3.4.5 M7菌株验证试验结果 | 第49页 |
| 3.5 讨论 | 第49-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第58-61页 |
| 致谢 | 第61页 |