小麦芽内切-β-(1,4)-D-木聚糖酶对麸皮中水溶性木聚糖降解作用
中文摘要 | 第8-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
1. 引言 | 第11-25页 |
1.1 麸皮 | 第11-12页 |
1.2 小麦 | 第12页 |
1.3 阿拉伯木聚糖 | 第12-18页 |
1.3.1 木聚糖基本结构 | 第12-13页 |
1.3.2 阿拉伯木聚糖的分类 | 第13页 |
1.3.3 阿拉伯木聚糖的分布 | 第13-14页 |
1.3.4 AX的理化性质 | 第14-16页 |
1.3.5 阿拉伯木聚糖的重要生理功能 | 第16页 |
1.3.6 AX的研究方法 | 第16-17页 |
1.3.7 AX的分离纯化 | 第17-18页 |
1.4 阿拉伯木聚糖酶 | 第18-21页 |
1.4.1 阿拉伯木聚糖酶系 | 第18页 |
1.4.2 小麦芽中阿拉伯木聚糖降解酶系 | 第18-19页 |
1.4.3 内切-β-(1,4)-D-木聚糖酶 | 第19页 |
1.4.4 小麦中木聚糖内切酶分离纯化 | 第19页 |
1.4.5 木聚糖内切酶的其他来源 | 第19-20页 |
1.4.6 木聚糖内切酶酶学性质 | 第20页 |
1.4.7 木聚糖内切酶酶解反应研究现状 | 第20-21页 |
1.5 AX对食品加工的影响 | 第21-22页 |
1.5.1 啤酒酿造中的AX | 第21-22页 |
1.5.2 面制品中的AX | 第22页 |
1.6 研究背景及意义 | 第22-23页 |
1.7 主要研究内容与目标 | 第23-25页 |
1.7.1 实验技术路线 | 第24页 |
1.7.2 研究内容 | 第24-25页 |
1.7.3 研究目标 | 第25页 |
2. 材料与方法 | 第25-35页 |
2.1 试验材料 | 第25页 |
2.2 主要试剂 | 第25-26页 |
2.3 主要仪器 | 第26-27页 |
2.4 试验方法 | 第27-32页 |
2.4.1 麦麸WEAX提取纯化流程 | 第27页 |
2.4.2 麦麸的预处理 | 第27页 |
2.4.3 麦麸WEAX提取条件的优化 | 第27-28页 |
2.4.4 麦麸WEAX的纯化 | 第28-29页 |
2.4.5 木聚糖内切酶分离纯化 | 第29页 |
2.4.6 小麦芽的预处理 | 第29页 |
2.4.7 木聚糖内切酶的分离纯化 | 第29-32页 |
2.4.8 木聚糖降解分析 | 第32页 |
2.5 分析方法 | 第32-35页 |
2.5.1 水分含量测定 | 第32页 |
2.5.2 β-葡聚糖的含量测定 | 第32页 |
2.5.3 蛋白质的含量测定 | 第32-33页 |
2.5.4 WEAX含量和得率的测定 | 第33页 |
2.5.5 单糖组成及AX含量测定 | 第33-34页 |
2.5.6 多糖分子量分布测定 | 第34-35页 |
2.5.7 黏度测定 | 第35页 |
2.6 数据分析 | 第35页 |
3. 结果与分析 | 第35-47页 |
3.1 麦麸中WEAX最佳提取条件的确定 | 第35-37页 |
3.1.1 最佳提取温度的确定 | 第35-36页 |
3.1.2 最佳料水比的确定 | 第36-37页 |
3.1.3 最佳提取时间的确定 | 第37页 |
3.2 最佳WEAX纯化条件的确定 | 第37-40页 |
3.2.1 β-葡聚糖酶添加量的确定 | 第37-38页 |
3.2.2 纯化过程除蛋白质条件的确定 | 第38-39页 |
3.2.3 乙醇浓度对醇沉效果的影响 | 第39-40页 |
3.3 纯化WEAX单糖组分及分子量测定 | 第40-42页 |
3.3.1 纯化WEAX单糖组分分析 | 第40-41页 |
3.3.2 纯化WEAX分子量分析 | 第41-42页 |
3.4 WEAX酶解实验 | 第42-47页 |
3.4.1 木聚糖内切酶的分离纯化 | 第42页 |
3.4.2 WEAX的性质分析 | 第42-45页 |
3.4.3 WEAX的酶解分析 | 第45-47页 |
4.讨论 | 第47-48页 |
4.1 AX的分析方法 | 第47页 |
4.2 AX的纯化方法 | 第47-48页 |
4.3 WEAX的酶解分析 | 第48页 |
4.4 进一步研究 | 第48页 |
5. 结论 | 第48-50页 |
参考文献 | 第50-57页 |
致谢 | 第57页 |