| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 英文缩写词表 | 第9-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-19页 |
| 1. 单增李斯特菌简介 | 第12页 |
| 2. 环境胁迫应答因子SigB简介 | 第12页 |
| 3. 生物被膜的研究现状 | 第12-16页 |
| 3.1 生物被膜概况 | 第12-13页 |
| 3.2 生物被膜的形成过程 | 第13页 |
| 3.3 生物被膜与食品安全 | 第13-14页 |
| 3.4 生物被膜的预防与控制 | 第14-16页 |
| 4. 单增李斯特菌生物被膜研究概况 | 第16-19页 |
| 第二章 不同培养条件下sigB对单增李斯特菌生物被膜形成的影响 | 第19-30页 |
| 1. 引言 | 第19-20页 |
| 2. 材料与方法 | 第20-22页 |
| 2.1 试验菌株 | 第20页 |
| 2.2 试剂和设备 | 第20页 |
| 2.3 生物被膜的形成与测定 | 第20页 |
| 2.4 荧光显微镜观察生物被膜结构 | 第20-21页 |
| 2.5 胞外多糖(Polysaccharide)及胞外蛋白(Extracellular protein)的测定 | 第21页 |
| 2.6 生物被膜活菌计数 | 第21页 |
| 2.7 不同培养温度、pH及NaCl浓度对李斯特菌生物被膜形成的影响 | 第21页 |
| 2.8 数据处理 | 第21-22页 |
| 3. 结果 | 第22-26页 |
| 3.1 不同温度、pH及NaCl浓度对WaX12与WaX12-△sigB生物被膜形成能力的影响 | 第22-24页 |
| 3.2 WaX12与WaX12-△sigB生物被膜胞外多糖、胞外蛋白及活菌数的测定 | 第24-25页 |
| 3.3 WaX12与WaX12-△sigB生物被膜胞外多糖、胞外蛋白及活菌数的测定 | 第25-26页 |
| 4. 讨论 | 第26-29页 |
| 5. 本章小结 | 第29-30页 |
| 第三章 乳酸钠协同条件下，sigB对单增李斯特菌生物被膜形成的影响 | 第30-42页 |
| 1. 引言 | 第30页 |
| 2. 材料与方法 | 第30-34页 |
| 2.1 材料与设备 | 第30-31页 |
| 2.2 方法 | 第31-34页 |
| 2.3 数据处理 | 第34页 |
| 3. 结果 | 第34-39页 |
| 3.1 不同浓度乳酸钠对单增李斯特菌WaX12与WaX12-△sigB生物被膜形成的影响 | 第34-35页 |
| 3.2 显微镜观察乳酸钠对单增李斯特WaX12与WaX12-△sigB生物被膜结构的影响 | 第35-36页 |
| 3.3 乳酸钠对单增李斯特菌WaX12与WaX12-△sigB生物被膜胞外多糖及胞外蛋白形成的影响 | 第36-37页 |
| 3.4 乳酸钠对单增李斯特菌WaX12与WaX12-△sigB生物被膜内细菌细胞活性的影响 | 第37页 |
| 3.5 乳酸钠对单增李斯特菌WaX12与WaX12-△sigB生物被膜内细菌细胞膜完整性的影响 | 第37-38页 |
| 3.6 乳酸钠对单增李斯特菌WaX12与WaX12-△sigB生物被膜相关基因表达量的影响 | 第38-39页 |
| 4. 讨论 | 第39-41页 |
| 5. 本章小结 | 第41-42页 |
| 第四章 环境胁迫应答因子SigB影响单增李斯特菌生物被膜形成的分子机制 | 第42-59页 |
| 1. 引言 | 第42-43页 |
| 2. 材料与方法 | 第43-44页 |
| 2.1 材料与设备 | 第43页 |
| 2.2 方法 | 第43-44页 |
| 3. 结果 | 第44-56页 |
| 3.1 差异基因GO注释分析 | 第44-48页 |
| 3.2 差异基因COG注释分析 | 第48-49页 |
| 3.3 差异基因KEGG通路注释分析 | 第49-56页 |
| 4. 讨论 | 第56-58页 |
| 5. 本章小结 | 第58-59页 |
| 全文总结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-69页 |
| 攻读硕士学位期间取得的科研成果 | 第69-70页 |
| 1. 发表中英文文章 | 第69页 |
| 2. 会议论文 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
