摘要 | 第11-13页 |
ABSTRACT | 第13-14页 |
第一章 文献综述 | 第15-31页 |
1 芽孢杆菌诱变育种研究应用进展 | 第15-19页 |
1.1 物理诱变 | 第15-17页 |
1.1.1 紫外诱变 | 第15-16页 |
1.1.2 离子注入诱变 | 第16页 |
1.1.3 电离辐射诱变 | 第16页 |
1.1.4 激光诱变 | 第16-17页 |
1.1.5 微波诱变 | 第17页 |
1.2 化学诱变 | 第17-18页 |
1.2.1 烷化剂 | 第17-18页 |
1.2.2 碱基类似物 | 第18页 |
1.2.3 无机化合物 | 第18页 |
1.3 复合诱变 | 第18-19页 |
2 原生质体融合技术在芽孢杆菌育种中的应用 | 第19-23页 |
2.1 原生质体的制备以及再生 | 第19-20页 |
2.1.1 原生质体的制备 | 第19-20页 |
2.1.2 原生质体的再生 | 第20页 |
2.2 原生质体的灭活 | 第20-21页 |
2.2.1 热灭活 | 第20-21页 |
2.2.2 紫外灭活 | 第21页 |
2.3 原生质体融合技术 | 第21-23页 |
2.3.1 原生质体融合的诱导方法 | 第21-22页 |
2.3.2 原生质体融合子的筛选 | 第22-23页 |
3 微生物抗菌脂肽研究和应用现状 | 第23-25页 |
3.1 抗菌脂肽在农业生产方面的应用 | 第23-24页 |
3.2 抗菌脂肽在畜牧业方面的应用 | 第24页 |
3.3 抗菌脂肽在食品添加剂方面的应用 | 第24页 |
3.4 抗菌脂肽在生物制药方面的应用 | 第24-25页 |
3.5 抗菌脂肽在环境污染治理方面的应用 | 第25页 |
4 本研究的目的意义和内容 | 第25-27页 |
参考文献 | 第27-31页 |
第二章 高产bacillomycin的枯草芽孢杆菌fmbJ菌株的诱变育种研究 | 第31-49页 |
1 材料与方法 | 第31-34页 |
1.1 材料 | 第31-32页 |
1.1.1 菌种 | 第31页 |
1.1.2 主要试剂 | 第31-32页 |
1.1.3 培养基 | 第32页 |
1.1.4 主要仪器与设备 | 第32页 |
1.2 方法 | 第32-34页 |
1.2.1 枯草芽孢杆菌fmbJ的菌种活化 | 第32页 |
1.2.2 枯草芽孢杆菌fmbJ的紫外诱变育种研究 | 第32-33页 |
1.2.3 枯草芽孢杆菌fmbJ的氮离子注入诱变育种研究 | 第33页 |
1.2.4 枯草芽孢杆菌fmbJ的NTG诱变育种研究 | 第33页 |
1.2.5 枯草芽孢杆菌fmbJ的EMS诱变育种研究 | 第33页 |
1.2.6 枯草芽孢杆菌fmbJ的EMS-UV复合诱变育种研究 | 第33-34页 |
1.2.7 高产bacillomycin菌株的初筛 | 第34页 |
1.2.8 高产bacillomycin菌株的复筛 | 第34页 |
1.2.9 高产bacillomycin菌株遗传稳定性研究 | 第34页 |
2 结果与分析 | 第34-44页 |
2.1 枯草芽孢杆菌fmbJ的物理诱变及高产bacillomycin菌株的筛选 | 第34-39页 |
2.1.1 紫外诱变 | 第34-36页 |
2.1.2 氮离子注入诱变 | 第36-39页 |
2.2 枯草芽孢杆菌fmbJ的化学诱变及高产bacillomycin菌株的筛选 | 第39-42页 |
2.2.1 NTG诱变 | 第39-40页 |
2.2.2 EMS诱变 | 第40-42页 |
2.3 枯草芽孢杆菌fmbJ的复合诱变及高产bacillomycin菌株的筛选 | 第42-44页 |
2.3.1 EMS-UV复合诱变 | 第42-44页 |
2.4 高产bacillomycin菌株的遗传稳定性研究 | 第44页 |
3 讨论 | 第44-45页 |
4 本章小结 | 第45-47页 |
参考文献 | 第47-49页 |
第三章 原生质体融合选育高产bacillomycin菌株的研究 | 第49-63页 |
1 材料与方法 | 第49-53页 |
1.1 材料 | 第49-50页 |
1.1.1 菌种 | 第49页 |
1.1.2 主要试剂 | 第49-50页 |
1.1.3 培养基 | 第50页 |
1.1.4 主要仪器与设备 | 第50页 |
1.2 方法 | 第50-53页 |
1.2.1 菌种活化 | 第50页 |
1.2.2 菌株UV60-4与N84在完全培养基中生长曲线的测定 | 第50-51页 |
1.2.3 菌株枯草芽孢杆菌fmbJ UV60-4与N84原生质体的制备 | 第51页 |
1.2.4 菌株枯草芽孢杆菌fmbJ UV60-4与N84原生质体再生 | 第51页 |
1.2.5 高渗液的选择 | 第51页 |
1.2.6 菌株枯草芽孢杆菌fmbJ UV60-4与N84原生质体的灭活 | 第51-52页 |
1.2.7 菌株枯草芽孢杆菌fmbJ UV60-4与N84原生质体的融合 | 第52页 |
1.2.8 菌株枯草芽孢杆菌fmbJ UV60-4与N84融合子的筛选 | 第52-53页 |
2 结果与分析 | 第53-60页 |
2.1 菌株UV60-4与N84原生质体制备与再生条件的选择 | 第53-57页 |
2.1.1 菌龄的选择 | 第53-54页 |
2.1.2 菌株UV60-4的原生质体制备与再生条件的选择 | 第54-56页 |
2.1.3 菌株N84的原生质体制备与再生条件的选择 | 第56-57页 |
2.2 菌株UV60-4与N84原生质体灭活条件的选择 | 第57-59页 |
2.2.1 热灭活条件的选择 | 第57-58页 |
2.2.2 紫外灭活条件的选择 | 第58-59页 |
2.3 菌株枯草芽孢杆菌fmbJ UV60-4与N84融合子筛选 | 第59页 |
2.3.1 融合子的筛选 | 第59页 |
2.4 高产bacillomycin融合子的遗传稳定性测定 | 第59-60页 |
3 讨论 | 第60-61页 |
4 本章小结 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-63页 |
第四章 抗菌脂肽bacillomycin防治大米黄曲霉霉变的研究 | 第63-73页 |
1 材料与方法 | 第63-65页 |
1.1 材料 | 第63-64页 |
1.1.1 菌种 | 第63页 |
1.1.2 主要试剂 | 第63-64页 |
1.1.3 培养基 | 第64页 |
1.1.4 主要仪器与设备 | 第64页 |
1.2 方法 | 第64-65页 |
1.2.1 抗菌脂肽bacillomycin样品的制备 | 第64页 |
1.2.2 大米黄曲霉霉变条件的模拟 | 第64-65页 |
1.2.3 Bacillomycin处理后大米的感官评定 | 第65页 |
1.2.4 Bacillomycin处理后大米霉菌总量的测定 | 第65页 |
1.2.5 Bacillomycin处理后大米脂肪酸含量的测定 | 第65页 |
2 结果与分析 | 第65-69页 |
2.1 大米黄曲霉霉变条件的模拟 | 第65-66页 |
2.1.1 温度条件的筛选 | 第65-66页 |
2.1.2 黄曲霉接种量以及水分条件的筛选 | 第66页 |
2.2 Bacillomycin处理后大米的感官评价 | 第66-68页 |
2.3 Bacillomycin处理后大米的霉菌总数的变化 | 第68页 |
2.4 Bacillomycin处理后大米的脂肪酸含量的变化 | 第68-69页 |
3 讨论 | 第69-70页 |
4 本章小结 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-73页 |
全文结论 | 第73-75页 |
创新点 | 第75-77页 |
攻读硕士期间发表的文章 | 第77-79页 |
致谢 | 第79页 |