| 摘要 | 第1-13页 |
| Abstract | 第13-15页 |
| 1 引言 | 第15-28页 |
| ·乳酸菌胞外多糖简介 | 第15-17页 |
| ·胞外多糖的种类和结构 | 第15页 |
| ·乳酸菌胞外多糖的生理功能 | 第15-16页 |
| ·乳酸菌EPS在食品工业中的应用 | 第16-17页 |
| ·乳酸菌EPS应用的前景展望 | 第17页 |
| ·树突状细胞 | 第17-20页 |
| ·树突状细胞的鉴定 | 第17页 |
| ·树突状细胞的分类 | 第17-18页 |
| ·DC的抗原提呈功能 | 第18页 |
| ·肠道树突状细胞的类型、作用和分布 | 第18-19页 |
| ·树突状细胞的迁移 | 第19-20页 |
| ·肠黏膜固有层树突状细胞亚型 | 第20页 |
| ·小肠黏膜固有层DCs的研究意义 | 第20页 |
| ·IL-12以及在DCS迁移过程中扮演重要角色的趋化因子 | 第20-21页 |
| ·白细胞介素(IL)12简介 | 第20-21页 |
| ·FKN与CX3CR1简介 | 第21页 |
| ·MIP-3α及其受体CCR6在DC迁移中的作用 | 第21页 |
| ·L.CASEI胞外多糖影响DCs过程中可能存在的表观遗传学现象 | 第21-25页 |
| ·DNA甲基化 | 第22-23页 |
| ·组蛋白修饰 | 第23-24页 |
| ·组蛋白乙酰化和去乙酰化 | 第24-25页 |
| ·研究的目的与意义 | 第25-26页 |
| ·研究的目的 | 第25页 |
| ·研究的意义 | 第25-26页 |
| ·研究的主要内容 | 第26页 |
| ·课题创新点 | 第26-27页 |
| ·实验流程图 | 第27-28页 |
| 2 材料与方法 | 第28-42页 |
| ·材料 | 第28-31页 |
| ·实验所用试剂 | 第28-29页 |
| ·实验所用动物 | 第29页 |
| ·实验所用菌种 | 第29页 |
| ·实验所用仪器和设备 | 第29-30页 |
| ·实验所用试剂的配制 | 第30-31页 |
| ·方法 | 第31-42页 |
| ·干酪乳杆菌胞外多糖的提取 | 第31页 |
| ·小鼠骨髓树突状细胞的体外培养 | 第31-32页 |
| ·流式细胞仪检测树突状细胞表面分子 | 第32页 |
| ·流式细胞仪检测小鼠肠黏膜固有层中树突状细胞亚型 | 第32-33页 |
| ·酶联免疫检测小鼠树突状细胞趋化因子、趋化因子受体和IL-12分泌量 | 第33-34页 |
| ·RT-PCR检测小鼠树突状细胞趋化因子、趋化因子受体和IL-12 mRNA的表达水平 | 第34-38页 |
| ·染色质免疫沉淀试剂盒检测小鼠骨髓来源树突状细胞组蛋白H3乙酰化水平 | 第38-42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-62页 |
| ·倒置显微镜下细胞的形态 | 第42页 |
| ·EPS对肠黏膜固有层中DCs和血液中DCs数量的影响 | 第42-44页 |
| ·EPS对肠黏膜固有层中DCs数量的影响 | 第42-43页 |
| ·EPS对小鼠血液中DCs数量的影响 | 第43-44页 |
| ·EPS对肠黏膜固有层DCs表面分子表达水平的影响 | 第44-46页 |
| ·EPS对肠黏膜固有层中DCs表面MHCⅡ分子表达水平的影响 | 第44-45页 |
| ·EPS对肠黏膜固有层中DCs表面CD80表达水平的影响 | 第45-46页 |
| ·EPS对肠黏膜固有层DCs亚型的影响 | 第46-47页 |
| ·EPS对肠黏膜固有层DCs分泌趋化因子的调控 | 第47-52页 |
| ·EPS对小鼠血清中FKN浓度的影响 | 第47-49页 |
| ·EPS对小鼠血清中MIP-3α浓度的影响 | 第49-50页 |
| ·EPS对小鼠血清中IL-12p70浓度的影响 | 第50-52页 |
| ·EPS对骨髓来源DCs分泌趋化因子受体的调控 | 第52-56页 |
| ·EPS对DCs分泌CX3CR1的影响 | 第52-53页 |
| ·EPS对DCs分泌CCR6的影响 | 第53-55页 |
| ·EPS对DCs分泌IL-12p70的影响 | 第55-56页 |
| ·EPS对肠黏膜固有层DCs趋化因子MRNA转录水平的调控 | 第56-57页 |
| ·EPS对FKN基因mRNA转录水平的影响 | 第56页 |
| ·EPS对MIP-3α基因mRNA转录水平的影响 | 第56-57页 |
| ·EPS对骨髓来源树突状细胞趋化因子受体和IL-12 MRNA表达的调控 | 第57-59页 |
| ·EPS对CX3CR1基因mRNA转录水平的影响 | 第57-58页 |
| ·EPS对CCR6基因mRNA表达水平的影响 | 第58页 |
| ·EPS对IL-12p35基因mRNA表达水平的影响 | 第58-59页 |
| ·EPS对IL-12p40基因mRNA表达水平的影响 | 第59页 |
| ·EPS对骨髓来源树突状细胞IL-12基因组蛋白H3乙酰化的影响 | 第59-62页 |
| ·EPS对IL-12p35基因启动子组蛋白H3乙酰化水平的影响 | 第59-60页 |
| ·EPS对IL-12p40基因启动子组蛋白H3乙酰化水平的影响 | 第60-62页 |
| 4 讨论 | 第62-65页 |
| ·干酪乳杆菌胞外多糖对DCs迁移的影响 | 第62-63页 |
| ·干酪乳杆菌胞外多糖对DCs分泌1L-12P70的影响 | 第63页 |
| ·干酪乳杆菌胞外多糖对DCs特异性表明标志的影响 | 第63页 |
| ·干酪乳杆菌胞外多糖对肠黏膜固有层中DCs亚型的影响 | 第63-64页 |
| ·干酪乳杆菌胞外多糖对IL-12乙酰化水平的影响 | 第64-65页 |
| 5 结论 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-74页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第74页 |
