| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-28页 |
| 1.1 大豆蛋白和大豆活性肽研究进展 | 第13-15页 |
| 1.1.1 大豆蛋白 | 第13-14页 |
| 1.1.2 大豆活性肽 | 第14-15页 |
| 1.2 免疫活性肽研究进展 | 第15-17页 |
| 1.2.1 免疫活性肽来源 | 第15-16页 |
| 1.2.2 免疫活性肽功能测定 | 第16-17页 |
| 1.3 细胞自噬研究概况 | 第17-23页 |
| 1.3.1 自噬的概念及发生过程 | 第18-19页 |
| 1.3.2 自噬与炎症和免疫的关系 | 第19-22页 |
| 1.3.3 自噬与细胞周期 | 第22-23页 |
| 1.3.4 自噬的研究方法 | 第23页 |
| 1.4 PI3K/AKT/mTOR通路 | 第23-25页 |
| 1.4.1 PI3K/AKT/mTOR信号通路简介 | 第23-24页 |
| 1.4.2 PI3K/AKT/mTOR信号通路对于细胞自噬的作用 | 第24-25页 |
| 1.5 本论文研究概况 | 第25-28页 |
| 1.5.1 研究意义 | 第25页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第25-26页 |
| 1.5.3 研究路线 | 第26-28页 |
| 第二章 大豆寡肽QRPR对RAW264.7炎症模型的保护作用 | 第28-43页 |
| 2.1 材料与设备 | 第28-32页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.2 实验试剂的配制 | 第29-30页 |
| 2.1.3 仪器与设备 | 第30-32页 |
| 2.2 试验方法 | 第32-36页 |
| 2.2.1 小鼠腹腔巨噬细胞(RAW264.7)细胞培养 | 第32-33页 |
| 2.2.2 细胞计数 | 第33页 |
| 2.2.3 MTS法检测细胞存活率 | 第33-34页 |
| 2.2.4 酶联免疫法测定小鼠白介素6(IL-6)与肿瘤坏死因子(TNF-α)的含量 | 第34页 |
| 2.2.5 RAW264.7炎症模型的建立 | 第34-35页 |
| 2.2.6 大豆寡肽QRPR对RAW264.7细胞的毒性作用 | 第35页 |
| 2.2.7 大豆寡肽QRPR对LPS炎症模型RAW264.7细胞的作用 | 第35页 |
| 2.2.8 数据统计与分析 | 第35-36页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第36-42页 |
| 2.3.1 RAW264.7细胞炎症模型的建立 | 第36-39页 |
| 2.3.2 大豆寡肽QRPR对LPS炎症模型RAW264.7细胞TNF-α分泌的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.3 大豆寡肽QRPR对LPS炎症模型RAW264.7细胞IL-6分泌的影响 | 第40-41页 |
| 2.3.4 大豆寡肽QRPR对RAW264.7细胞的毒性作用 | 第41-42页 |
| 2.4 本章小结 | 第42-43页 |
| 第三章 大豆寡肽QRPR激活自噬缓解RAW264.7细胞炎症反应 | 第43-57页 |
| 3.1 材料与设备 | 第43-48页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第43-44页 |
| 3.1.2 实验试剂的配制 | 第44-47页 |
| 3.1.3 仪器与设备 | 第47-48页 |
| 3.2 实验方法 | 第48-51页 |
| 3.2.1 Western-blot检测QRPR对细胞炎症模型自噬标志蛋白表达 | 第48-49页 |
| 3.2.2 MDC染色法标记自噬泡 | 第49-50页 |
| 3.2.3 自噬抑制剂3MA对大豆寡肽QRPR减弱炎症反应的影响 | 第50页 |
| 3.2.4 siRNA敲除Atg5基因对大豆寡肽QRPR减弱炎症反应的影响 | 第50页 |
| 3.2.5 数据分析 | 第50-51页 |
| 3.3 实验结果 | 第51-56页 |
| 3.3.1 大豆寡肽QRPR对RAW264.7细胞炎症模型自噬相关蛋白表达影响. | 第51-52页 |
| 3.3.2 MDC染色法标记自噬泡 | 第52-53页 |
| 3.3.3 自噬抑制剂3MA对大豆寡肽QRPR减弱炎症反应的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.4 敲除Atg5基因对对大豆寡肽QRPR减弱炎症反应的影响 | 第54-56页 |
| 3.4 本章小结 | 第56-57页 |
| 第四章 大豆寡肽QRPR激活自噬缓解细胞炎症反应的机制探究 | 第57-71页 |
| 4.1 材料与设备 | 第57-59页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第57-58页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第58-59页 |
| 4.2 实验方法 | 第59-63页 |
| 4.2.1 Western-blot检测QRPR对RAW264.7细胞自噬标志蛋白的影响 | 第59页 |
| 4.2.2 透射电子显微镜观察自噬小体 | 第59-60页 |
| 4.2.3 实时荧光定量PCR检测mRNA表达量 | 第60-62页 |
| 4.2.4 流式细胞术检测QRPR对细胞周期的影响 | 第62-63页 |
| 4.2.5 数据分析 | 第63页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第63-70页 |
| 4.3.1 大豆寡肽QRPR激活自噬 | 第63-64页 |
| 4.3.2 透射电子显微镜观察自噬小体 | 第64-65页 |
| 4.3.3 大豆寡肽QRPR对PI3K/AKT/mTOR信号通路蛋白表达的影响 | 第65-67页 |
| 4.3.4 大豆寡肽QRPR对PI3K/AKT/mTOR信号通路mRNA表达的影响 | 第67-68页 |
| 4.3.5 大豆寡肽QRPR通过PI3K/AKT/mTOR通路影响RAW264.7细胞周期 | 第68-70页 |
| 4.4 本章小结 | 第70-71页 |
| 第五章 结论 | 第71-73页 |
| 5.1 全文结论 | 第71-72页 |
| 5.2 创新点 | 第72页 |
| 5.3 展望 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-82页 |
| 导师简介 | 第82-84页 |
| 作者简介及科研成果 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85页 |
