摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4-5页 |
主要符号对照表 | 第10-11页 |
第1章 引言 | 第11-25页 |
1.1 糖尿病的研究现状 | 第11-17页 |
1.1.1 糖尿病概述与研究方法 | 第11-15页 |
1.1.2 糖尿病的治疗方法 | 第15-17页 |
1.2 海藻膳食纤维研究进展 | 第17-19页 |
1.2.1 膳食纤维的定义与分类 | 第17-18页 |
1.2.2 海藻膳食纤维抗糖尿病作用研究进展 | 第18-19页 |
1.3 黄芪多糖生物活性研究进展 | 第19-21页 |
1.3.1 黄芪多糖增强免疫活性 | 第19-20页 |
1.3.2 黄芪多糖抗氧化活性 | 第20页 |
1.3.3 黄芪多糖抗肿瘤活性 | 第20页 |
1.3.4 黄芪多糖抗病毒活性 | 第20-21页 |
1.3.5 黄芪多糖抗糖尿病活性 | 第21页 |
1.4 葛根黄酮生物活性研究进展 | 第21-22页 |
1.4.1 葛根黄酮对心血管系统的作用 | 第21页 |
1.4.2 葛根黄酮抗氧化作用 | 第21-22页 |
1.4.3 葛根黄酮抗肿瘤作用 | 第22页 |
1.4.4 葛根黄酮降血脂、血糖作用 | 第22页 |
1.5 桑叶黄酮生物活性研究进展 | 第22-23页 |
1.5.1 桑叶黄酮抗氧化作用 | 第22-23页 |
1.5.2 桑叶黄酮降血脂、血糖作用 | 第23页 |
1.5.3 桑叶黄酮抗肿瘤作用 | 第23页 |
1.6 本研究的意义和主要内容 | 第23-25页 |
1.6.1 本研究的意义 | 第23-24页 |
1.6.2 本研究的主要内容 | 第24-25页 |
第2章 黄芪、葛根、桑叶有效成分的提取 | 第25-37页 |
2.1 材料与方法 | 第25-26页 |
2.1.1 实验试剂与材料 | 第25-26页 |
2.1.2 实验仪器 | 第26页 |
2.1.3 实验材料 | 第26页 |
2.1.4 5%苯酚溶液的配制 | 第26页 |
2.2 实验方法 | 第26-30页 |
2.2.1 黄芪提取物的提取及黄芪多糖含量测定 | 第27-29页 |
2.2.2 葛根、桑叶提取物的提取及总黄酮含量测定 | 第29-30页 |
2.3 数据统计与分析 | 第30-31页 |
2.4 实验结果 | 第31-34页 |
2.4.1 液料比(水:黄芪)对黄芪提取物提取率及多糖含量的影响 | 第31-32页 |
2.4.2 乙醇体积分数对葛根、桑叶提取物提取率及总黄酮含量的影响 | 第32-34页 |
2.5 本章讨论与小结 | 第34-37页 |
2.5.1 讨论 | 第34-35页 |
2.5.2 小结 | 第35-37页 |
第3章 黄芪、葛根、桑叶提取物抗氧化应激作用研究 | 第37-69页 |
3.1 材料与方法 | 第37-41页 |
3.1.1 实验试剂与材料 | 第37-38页 |
3.1.2 实验仪器 | 第38-39页 |
3.1.3 实验细胞 | 第39页 |
3.1.4 主要试剂的配制 | 第39-41页 |
3.2 实验方法 | 第41-42页 |
3.2.1 INS-1 细胞生长曲线的绘制 | 第41页 |
3.2.2 四氧嘧啶对 INS-1 细胞毒性的测定 | 第41页 |
3.2.3 中药提取物对 INS-1 细胞增殖的影响 | 第41-42页 |
3.2.4 中药提取物对葡萄糖刺激的胰岛素分泌的影响 | 第42页 |
3.2.5 中药提取物对 INS-1 细胞氧化应激作用的影响 | 第42页 |
3.3 数据统计与分析 | 第42页 |
3.4 实验结果 | 第42-66页 |
3.4.1 INS-1 细胞生长曲线的绘制 | 第43-45页 |
3.4.2 四氧嘧啶诱导 INS-1 细胞氧化应激浓度的确定 | 第45-46页 |
3.4.3 APS,PFS 与 MFS 对 INS-1 细胞增殖毒性测定结果 | 第46页 |
3.4.4 APS 对氧化应激 INS-1 细胞的影响 | 第46-51页 |
3.4.5 PFS 对氧化应激 INS-1 细胞的影响 | 第51-55页 |
3.4.6 MFS 对氧化应激 INS-1 细胞的影响 | 第55-59页 |
3.4.7 TFS 对氧化应激 INS-1 细胞的影响 | 第59-62页 |
3.4.8 CPD 对氧化应激 INS-1 细胞的影响 | 第62-66页 |
3.5 本章讨论与小结 | 第66-69页 |
3.5.1 讨论 | 第66-67页 |
3.5.2 小结 | 第67-69页 |
第4章 复方海藻膳食纤维辅助降血糖研究 | 第69-83页 |
4.1 材料与方法 | 第69-70页 |
4.1.1 实验试剂与材料 | 第69-70页 |
4.1.2 实验仪器 | 第70页 |
4.1.3 实验材料与动物 | 第70页 |
4.2 实验方法 | 第70-72页 |
4.2.1 四氧嘧啶给药方式的确定 | 第70页 |
4.2.2 尾静脉注射四氧嘧啶剂量的确定 | 第70-71页 |
4.2.3 实验分组与给药 | 第71页 |
4.2.4 糖尿病小鼠进食量与饮水量的测定 | 第71-72页 |
4.2.5 糖尿病小鼠体重以及空腹血糖的测定 | 第72页 |
4.2.6 糖尿病小鼠口服葡萄糖耐量的测定 | 第72页 |
4.2.7 糖尿病小鼠胰岛组织学结构检查 | 第72页 |
4.3 数据统计与分析 | 第72页 |
4.4 实验结果 | 第72-81页 |
4.4.1 四氧嘧啶给药方式对小鼠内脏的影响 | 第72-73页 |
4.4.2 四氧嘧啶尾静脉注射剂量对糖尿病小鼠成模率的影响 | 第73-74页 |
4.4.3 糖尿病小鼠进食量与饮水量测定结果 | 第74-75页 |
4.4.4 糖尿病小鼠体重与空腹血糖测定结果 | 第75-77页 |
4.4.5 糖尿病小鼠口服葡萄糖耐量测定结果 | 第77-78页 |
4.4.6 糖尿病小鼠血清中血脂指标测定结果 | 第78-79页 |
4.4.7 小鼠胰腺组织 HE 染色结果 | 第79-81页 |
4.5 本章讨论与小结 | 第81-83页 |
4.5.1 讨论 | 第81页 |
4.5.2 小结 | 第81-83页 |
第5章 结论与展望 | 第83-85页 |
5.1 结论 | 第83页 |
5.2 展望 | 第83-85页 |
参考文献 | 第85-92页 |
致谢 | 第92-93页 |
个人简历、在校期间发表的学术论文与研究成果 | 第93页 |