| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第13-20页 |
| 1.1 麦胚资源概况 | 第13页 |
| 1.2 麦胚蛋白的研究 | 第13-15页 |
| 1.2.1 麦胚蛋白的萃取 | 第13-14页 |
| 1.2.2 麦胚蛋白结构性研究 | 第14-15页 |
| 1.2.3 麦胚蛋白功能性研究 | 第15页 |
| 1.3 抗氧化活性肽的研究 | 第15-19页 |
| 1.3.1 抗氧化肽的制备 | 第15-16页 |
| 1.3.2 抗氧化肽活性的测定 | 第16-17页 |
| 1.3.3 抗氧化肽的分离与纯化 | 第17-18页 |
| 1.3.4 抗氧化肽的结构鉴定 | 第18页 |
| 1.3.5 抗氧化肽的吸收与转运 | 第18-19页 |
| 1.4 本论文研究的意义及内容 | 第19-20页 |
| 1.4.1 本论文的研究意义 | 第19页 |
| 1.4.2 本论文的研究内容 | 第19-20页 |
| 第二章 麦胚蛋白的亚临界水萃取及其结构与功能性质研究 | 第20-40页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第20页 |
| 2.2.2 主要仪器与设备 | 第20-21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-24页 |
| 2.3.1 小麦麦胚的预处理 | 第21页 |
| 2.3.2 脱脂麦胚基本成分分析 | 第21页 |
| 2.3.3 可溶性蛋白含量的测定 | 第21-22页 |
| 2.3.4 亚临界水萃取麦胚蛋白的单因素试验设计 | 第22页 |
| 2.3.5 亚临界水萃取麦胚蛋白的响应面分析实验 | 第22页 |
| 2.3.6 麦胚蛋白萃取方法比较 | 第22-23页 |
| 2.3.7 两种方法萃取的麦胚蛋白结构特性检测 | 第23-24页 |
| 2.3.8 两种方法萃取的麦胚蛋白的功能特性检测 | 第24页 |
| 2.3.9 数据分析与处理 | 第24页 |
| 2.4 结果与分析 | 第24-39页 |
| 2.4.1 脱脂麦胚的成分分析 | 第24-25页 |
| 2.4.2 蛋白含量测定的标曲 | 第25页 |
| 2.4.3 单因素实验结果与分析 | 第25-28页 |
| 2.4.4 响应面实验结果与分析 | 第28-33页 |
| 2.4.5 两种方法萃取的麦胚蛋白结构特性分析 | 第33-39页 |
| 2.5 本章小结 | 第39-40页 |
| 第三章 麦胚蛋白酶解制备抗氧化肽的研究 | 第40-53页 |
| 3.1 引言 | 第40页 |
| 3.2 实验材料 | 第40-41页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第40-41页 |
| 3.2.2 主要仪器与设备 | 第41页 |
| 3.3 实验方法 | 第41-44页 |
| 3.3.1 酶解过程 | 第41-42页 |
| 3.3.2 水解度的测定 | 第42页 |
| 3.3.3 肽得率的测定 | 第42页 |
| 3.3.4 对酶解液DPPH清除率的测定 | 第42-43页 |
| 3.3.5 酶解液的超滤分级 | 第43页 |
| 3.3.6 酶解液超滤各组分的体外抗氧化活性测定 | 第43页 |
| 3.3.7 抗氧化活性肽的分离纯化及其组成分析 | 第43-44页 |
| 3.4 结果与分析 | 第44-52页 |
| 3.4.1 酶解制备多肽的水解度和肽得率 | 第44页 |
| 3.4.2 酶解液对DPPH清除的作用 | 第44-45页 |
| 3.4.3 酶解物超滤纯化各分级肽的占比 | 第45-46页 |
| 3.4.4 各分级肽的抗氧化活性测定结果 | 第46-47页 |
| 3.4.5 凝胶色谱G-15 分离肽UP-1(1 KDa) | 第47-48页 |
| 3.4.6 UF-1 各洗脱峰对DPPH自由基清除能力的比较 | 第48-49页 |
| 3.4.7 UF-1 各主要洗脱峰相对分子质量分布 | 第49页 |
| 3.4.8 G153 和G154 组分的RP-HPLC分析 | 第49-50页 |
| 3.4.9 G153 和G154 组分的氨基酸组成 | 第50-52页 |
| 3.5 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 抗氧化肽G154 的体外吸收与转运 | 第53-66页 |
| 4.1 引言 | 第53页 |
| 4.2 实验材料 | 第53-54页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第53-54页 |
| 4.2.2 主要仪器与设备 | 第54页 |
| 4.3 实验方法 | 第54-57页 |
| 4.3.1 Caco-2细胞的培养 | 第54页 |
| 4.3.2 MTT法测定G154 组分的细胞毒活性 | 第54页 |
| 4.3.3 Caco-2细胞模型的建立 | 第54-55页 |
| 4.3.4 Caco-2细胞模型完整性的评价 | 第55-56页 |
| 4.3.5 HPLC测定抗氧化活性肽浓度方法学研究 | 第56页 |
| 4.3.6 Caco-2细胞转运实验 | 第56-57页 |
| 4.3.7 数据处理 | 第57页 |
| 4.4 结果与分析 | 第57-65页 |
| 4.4.1 G154组分对Caco-2细胞存活率的影响 | 第57-58页 |
| 4.4.2 Caco-2细胞转运模型建立及评价 | 第58-61页 |
| 4.4.3 G154含量分析方法的建立 | 第61-62页 |
| 4.4.4 G154的跨膜转运实验 | 第62-65页 |
| 4.5 本章小结 | 第65-66页 |
| 第五章 结论与展望 | 第66-68页 |
| 5.1 结论 | 第66-67页 |
| 5.2 展望 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 在校期间发表论文 | 第77页 |
