| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 前言 | 第13-25页 |
| 1 蛋白质与多糖复合体系 | 第13-17页 |
| 1.1 蛋白质与多糖相互作用力 | 第14-15页 |
| 1.2 影响蛋白质-多糖复合体系形成的因素 | 第15-17页 |
| 1.2.1 pH和离子强度 | 第15-16页 |
| 1.2.2 蛋白质/多糖比例和浓度 | 第16页 |
| 1.2.3 电荷密度和分子量 | 第16-17页 |
| 1.2.4 其他因素 | 第17页 |
| 2 溶菌酶与果胶 | 第17-19页 |
| 2.1 溶菌酶 | 第17-18页 |
| 2.2 果胶 | 第18-19页 |
| 3 蛋白/多糖复合体系的应用研究 | 第19-23页 |
| 3.1 蛋白/多糖复合体系在营养递送系统中的应用 | 第19-21页 |
| 3.2 蛋白/多糖纳米载体在药物递送系统中的应用 | 第21-23页 |
| 4 本课题研究内容、意义及创新点 | 第23-25页 |
| 4.1 研究内容 | 第23-24页 |
| 4.2 研究意义 | 第24页 |
| 4.3 创新点 | 第24-25页 |
| 第二章 溶菌酶与果胶相互作用研究 | 第25-42页 |
| 1 引言 | 第25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-28页 |
| 2.1 原料与试剂 | 第25-26页 |
| 2.2 主要仪器与设备 | 第26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.3.1 溶菌酶与果胶复合溶液制备 | 第26-27页 |
| 2.3.2 溶菌酶/果胶复合溶液的微观结构观察 | 第27页 |
| 2.3.3 浊度滴定分析 | 第27页 |
| 2.3.4 电位及粒径分布测定 | 第27-28页 |
| 2.3.5 差示扫描量热(DSC)分析 | 第28页 |
| 2.3.6 圆二色谱(CD)分析 | 第28页 |
| 2.3.7 数据分析 | 第28页 |
| 3 结果与分析 | 第28-40页 |
| 3.1 溶菌酶/果胶复合物的形成及微观结构 | 第28-31页 |
| 3.2 质量比对在不同pH条件下形成溶菌酶/果胶复合体系的影响 | 第31-33页 |
| 3.3 离子强度对溶菌酶/果胶复合体系的影响 | 第33-34页 |
| 3.4 温度对溶菌酶/果胶复合体系的影响 | 第34-35页 |
| 3.5 果胶对溶菌酶的热特性影响 | 第35-36页 |
| 3.6 溶菌酶/果胶复合体系相互作用力的影响 | 第36-37页 |
| 3.7 果胶对溶菌酶的结构特性影响 | 第37-40页 |
| 3.9 溶菌酶与果胶复合体系的作用机理 | 第40页 |
| 4 讨论 | 第40-42页 |
| 第三章 溶菌酶/果胶复合体系对EGCG的包载作用 | 第42-61页 |
| 1 引言 | 第42-43页 |
| 2 材料与仪器 | 第43-46页 |
| 2.1 原料与试剂 | 第43页 |
| 2.2 主要仪器与设备 | 第43-44页 |
| 2.3 实验方法 | 第44-46页 |
| 2.3.1 溶菌酶/果胶复合体系的制备 | 第44页 |
| 2.3.2 EGCG-溶菌酶/果胶复合体系制备 | 第44页 |
| 2.3.3 荧光光谱法研究溶菌酶/果胶复合体系与EGCG相互作用 | 第44-45页 |
| 2.3.4 圆二色谱法测定溶菌酶/果胶复合体系与EGCG相互作用 | 第45页 |
| 2.3.5 EGCG-溶菌酶/果胶纳米复合物粒径分布测定 | 第45页 |
| 2.3.6 EGCG包封率的测定 | 第45页 |
| 2.3.7 DPPH自由基清除能力测定 | 第45-46页 |
| 2.3.8 ABTS·+自由基清除能力测定 | 第46页 |
| 2.3.9 数据分析 | 第46页 |
| 3 结果与分析 | 第46-60页 |
| 3.1 EGCG对溶菌酶作用的荧光光谱及猝灭机理 | 第46-50页 |
| 3.2 EGCG与溶菌酶及复合体系作用的结合位点和常数 | 第50-51页 |
| 3.3 EGCG与溶菌酶及复合体系的作用力 | 第51-52页 |
| 3.4 同步荧光光谱法研究EGCG与溶菌酶及复合体系的相互作用 | 第52-54页 |
| 3.5 EGCG对溶菌酶二级结构的影响 | 第54-56页 |
| 3.6 负载EGCG的复合物和纳米凝胶的粒径变化 | 第56-57页 |
| 3.7 复合体系对EGCG的包封率 | 第57-58页 |
| 3.8 EGCG对自由基的清除能力 | 第58-60页 |
| 4 讨论 | 第60-61页 |
| 第四章 溶菌酶/果胶纳米凝胶的构建及载药特性研究 | 第61-81页 |
| 1 引言 | 第61-62页 |
| 2 材料与仪器 | 第62-66页 |
| 2.1 原料与试剂 | 第62页 |
| 2.2 主要仪器与设备 | 第62-63页 |
| 2.3 实验方法 | 第63-66页 |
| 2.3.1 溶菌酶-果胶纳米凝胶的制备 | 第63页 |
| 2.3.2 负载甲氨蝶呤（MTX）纳米凝胶的制备 | 第63-64页 |
| 2.3.3 包封率及负载量的测定 | 第64页 |
| 2.3.4 纳米凝胶的表征 | 第64页 |
| 2.3.5 体外释放 | 第64-65页 |
| 2.3.6 细胞培养 | 第65页 |
| 2.3.7 细胞毒性实验 | 第65页 |
| 2.3.8 细胞对载药纳米凝胶吞噬研究 | 第65页 |
| 2.3.9 流式细胞术测定细胞凋亡 | 第65-66页 |
| 2.3.10 数据分析 | 第66页 |
| 3 结果与分析 | 第66-80页 |
| 3.1 纳米凝胶制备条件的优化 | 第66-68页 |
| 3.2 纳米凝胶的稳定性 | 第68-69页 |
| 3.3 纳米凝胶的表征 | 第69-71页 |
| 3.4 载MTX纳米凝胶的制备 | 第71-72页 |
| 3.5 载MTX纳米凝胶的表征 | 第72-74页 |
| 3.6 MTX的体外释放行为 | 第74-75页 |
| 3.7 体外细胞毒性实验 | 第75-77页 |
| 3.8 MTX-纳米凝胶的细胞吞噬研究 | 第77-78页 |
| 3.9 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第78-80页 |
| 4 讨论 | 第80-81页 |
| 第五章 结论与展望 | 第81-83页 |
| 1 结论 | 第81-82页 |
| 2 展望 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 硕士期间发表论文 | 第99页 |
