| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-27页 |
| ·白藜芦醇简介 | 第13-17页 |
| ·白藜芦醇的理化性质 | 第13-14页 |
| ·白藜芦醇的生理功能 | 第14-17页 |
| ·白藜芦醇的提取方法研究进展 | 第17-20页 |
| ·溶剂提取法 | 第17-18页 |
| ·超临界流体萃取法 | 第18页 |
| ·酶法提取 | 第18-19页 |
| ·微波辅助提取法 | 第19页 |
| ·超声波辅助提取法 | 第19-20页 |
| ·白藜芦醇的检测方法研究进展 | 第20-22页 |
| ·高效液相色谱法（HPLC） | 第20页 |
| ·色质联用法 | 第20-21页 |
| ·荧光法 | 第21页 |
| ·化学发光法 | 第21-22页 |
| ·其他方法 | 第22页 |
| ·HUVE 细胞的损伤及其保护 | 第22-24页 |
| ·导致 HUVE 细胞损伤的因素 | 第23页 |
| ·减弱 HUVE 细胞损伤的物质 | 第23-24页 |
| ·国内外白藜芦醇的研究概况和发展趋势 | 第24-25页 |
| ·本课题研究的意义 | 第25-26页 |
| ·本课题研究内容 | 第26-27页 |
| 第二章 葡萄皮中白藜芦醇的高效提取工艺的研究 | 第27-53页 |
| ·前言 | 第27页 |
| ·材料与设备 | 第27-28页 |
| ·材料 | 第27页 |
| ·试剂 | 第27-28页 |
| ·主要实验仪器 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-33页 |
| ·原料的预处理 | 第28页 |
| ·白藜芦醇的含量检测方法的建立 | 第28-29页 |
| ·白藜芦醇的稳定性的研究 | 第29-30页 |
| ·白藜芦醇的提取工艺流程图 | 第30页 |
| ·乙醇振荡提取葡萄皮中白藜芦醇的研究 | 第30-31页 |
| ·复合酶结合乙醇振荡提取葡萄皮中白藜芦醇的研究 | 第31-32页 |
| ·复合酶辅助与直接乙醇振荡提取方法的比较 | 第32-33页 |
| ·乙酸乙酯萃取白藜芦醇的研究 | 第33页 |
| ·实验结果与分析 | 第33-50页 |
| ·高效液相色谱法测定白藜芦醇的含量 | 第33-35页 |
| ·白藜芦醇的稳定性的研究 | 第35-37页 |
| ·乙醇振荡提取葡萄皮中白藜芦醇的实验结果 | 第37-40页 |
| ·复合酶结合乙醇振荡提取葡萄皮中白藜芦醇的实验结果 | 第40-49页 |
| ·复合酶辅助与直接乙醇振荡提取方法的比较 | 第49-50页 |
| ·乙酸乙酯萃取白藜芦醇的研究 | 第50页 |
| ·讨论 | 第50-51页 |
| ·本章小结 | 第51-53页 |
| 第三章 白藜芦醇对 H_2O_2诱导 HUVE 细胞损伤的保护作用 | 第53-72页 |
| ·前言 | 第53-54页 |
| ·材料与设备 | 第54-55页 |
| ·材料与试剂 | 第54-55页 |
| ·主要实验仪器 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55-61页 |
| ·细胞培养 | 第55-56页 |
| ·分组设计 | 第56页 |
| ·细胞的预处理 | 第56页 |
| ·MTT 法检测细胞生长活力 | 第56-57页 |
| ·流式细胞仪检测 HUVE 细胞凋亡率 | 第57页 |
| ·细胞总 RNA 的提取、定量、纯度检测 | 第57-58页 |
| ·实时荧光定量 PCR | 第58-61页 |
| ·统计处理 | 第61页 |
| ·实验结果与分析 | 第61-69页 |
| ·H_2O_2对 HUVE 细胞生长活力的影响 | 第61-62页 |
| ·白藜芦醇对 H_2O_2诱导 HUVE 细胞生长活力的影响 | 第62-63页 |
| ·白藜芦醇对 H_2O_2诱导 HUVE 细胞损伤凋亡率的影响 | 第63-66页 |
| ·RNA 样品的定量及纯度检测结果 | 第66页 |
| ·实时荧光定量 PCR 结果 | 第66-69页 |
| ·讨论 | 第69-70页 |
| ·本章小结 | 第70-72页 |
| 第四章 主要结论与创新点 | 第72-74页 |
| ·主要结论 | 第72-73页 |
| ·创新点 | 第73页 |
| ·今后努力和研究方向 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第84页 |
