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Lactococcus lactis有氧呼吸末期乳酸利用酶的鉴定及其调控机制的研究

CONTENS第1-10页
摘要第10-13页
Abstract第13-17页
1 前言第17-31页
   ·立题背景第17-18页
   ·文献综述第18-29页
     ·乳酸乳球菌的简介第18页
     ·L. lactis 的有氧呼吸代谢第18-22页
     ·L. lactis 的丙酮酸代谢及其调节第22-24页
     ·催化 L-乳酸氧化生成丙酮酸的酶第24-29页
   ·本研究的目的和意义第29-30页
   ·课题来源第30页
   ·本论文的主要研究内容第30-31页
2 材料与方法第31-48页
   ·材料与设备第31-34页
     ·实验菌株与载体第31页
     ·合成的引物第31-32页
     ·主要仪器设备第32-33页
     ·主要试剂及试剂盒第33-34页
     ·软件及网络资源第34页
   ·实验方法第34-48页
     ·主要试剂的配制第34-36页
     ·L. lactis MG1363 中 L-LDH 活性的测定第36-37页
     ·重组 fni 基因表达菌株的构建第37-39页
     ·重组 FNI 的表达纯化及活性测定第39-41页
     ·NADH 氧化酶表达菌株的构建第41-43页
     ·用 pQE 表达载体构建 ldh 的表达菌株第43-44页
     ·用 pEASY 载体构建 ldh 的表达菌株第44-46页
     ·细胞内代谢物的测定第46-48页
3 结果与分析第48-72页
   ·生物信息学评估催化乳酸氧化的酶第48-54页
     ·非黄素含铁硫簇多亚基蛋白同源物第48-49页
     ·含黄素和铁硫簇蛋白的同源物第49页
     ·α-羟酸脱氢酶同源蛋白第49-53页
     ·L-nLDH 催化乳酸氧化的可能性第53-54页
   ·L. lactis 呼吸及发酵培养物的 LDH 活性第54-57页
     ·L. lactis 呼吸及发酵培养物的生长曲线第54-55页
     ·L. lactis 呼吸及发酵培养物的 LDH 活性第55-57页
   ·重组 FNI 的表达纯化及酶学性质分析第57-61页
     ·fni 基因表达载体的构建第57-58页
     ·重组 FNI 的 SDS-PAGE 分析第58页
     ·重组 FNI 产物的光谱扫描第58-59页
     ·NMR 测定重组 FNI 的 II 型 IPP 异构酶活性第59-60页
     ·重组 FNI 乳酸脱氢酶活性的测定第60-61页
   ·重组 NoxE 的表达纯化及性质测定第61-63页
     ·noxE 基因表达载体的构建第61-62页
     ·NoxE 纯化产物的 SDS-PAGE 分析第62页
     ·重组 NoxE 的光谱吸收特性第62-63页
     ·NoxE 活性及对 FNI 乳酸氧化活性的影响第63页
   ·重组 LDHA 表达菌株的构建第63-67页
     ·利用 pQE 载体构建 LDHA 表达菌株第63-65页
     ·利用 pEASY 载体构建 LDHA 表达菌株第65-67页
   ·重组 LDHA 酶学性质的测定第67-70页
     ·LDHA 的酶促动力学分析第67页
     ·效应物对 LDHA 活性的影响第67-68页
     ·腺嘌呤核苷酸对 LDHA 活性的影响第68-69页
     ·底物和产物浓度对 LDHA 活性的影响第69-70页
   ·NoxE 对 LDHA 乳酸氧化活性的影响第70页
   ·呼吸培养物细胞内代谢物分析第70-72页
4 讨论第72-79页
   ·呼吸代谢的发生时期第72-73页
   ·有氧呼吸积累更高生物量的原因第73页
   ·L. lactis 利用乳酸的独特性第73-74页
   ·FNI 不具备显著 LDH 活性的分析第74-75页
   ·LutABC 蛋白复合物的功用第75页
   ·重新审视 L-nLDH 的乳酸氧化能力第75-76页
   ·L. lactis 中乳酸氧化依赖于培养时期第76页
   ·乳酸氧化依赖于有氧呼吸培养方式第76-77页
   ·呼吸培养物利用乳酸的必然性分析第77-78页
   ·模拟体内环境的酶活测定体系第78-79页
5 结论第79-80页
致谢第80-81页
参考文献第81-91页
附录第91-97页
攻读博士学位期间发表的学术论文第97页

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