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蜡样芽孢杆菌LJ01中亚硝酸盐还原酶的基因克隆、表达纯化及酶学性质研究

摘要第5-7页
Abstract第7-8页
第一章 绪论第14-30页
    1.1 亚硝酸盐的概述第14-15页
    1.2 亚硝酸盐的饮食来源第15-17页
    1.3 亚硝酸盐对人体健康的利弊第17-19页
        1.3.1 亚硝酸盐对人体健康的危害第17-18页
        1.3.2 亚硝酸盐的潜在益处第18-19页
    1.4 控制食品中亚硝酸盐的含量第19-22页
        1.4.1 物理方法第20-21页
        1.4.2 化学方法第21页
        1.4.3 生物方法第21-22页
    1.5 亚硝酸盐还原酶第22-28页
        1.5.1 亚硝酸盐还原酶的分类第22-27页
            1.5.1.1 铜型亚硝酸盐还原酶第23-24页
            1.5.1.2 细胞色素cd_1型亚硝酸盐还原酶第24-25页
            1.5.1.3 多聚血红素c型亚硝酸盐还原酶第25-26页
            1.5.1.4 依赖于铁氧还原蛋白的亚硝酸盐还原酶第26-27页
        1.5.2 亚硝酸盐还原酶的活性测定第27页
        1.5.3 亚硝酸盐还原酶的分离纯化方法第27-28页
    1.6 本论文的研究意义和研究内容第28-30页
        1.6.1 研究意义第28页
        1.6.2 研究内容第28-30页
第二章 蜡样芽孢杆菌LJ01中亚硝酸盐还原酶的基因克隆和异源表达第30-60页
    2.1 引言第30-31页
    2.2 实验材料与仪器第31-34页
        2.2.1 实验菌株第31页
        2.2.2 主要试剂第31页
        2.2.3 主要仪器第31页
        2.2.4 培养基和溶液第31-34页
            2.2.4.1 培养基第32页
            2.2.4.2 溶液第32-34页
            2.2.4.3 SDS-丙烯酰胺凝胶电泳制胶方法第34页
    2.3 实验方法第34-44页
        2.3.1 B.cereusLJ01中NiR编码基因的扩增第34-35页
        2.3.2 B.cereusLJ01中NiR编码基因的纯化回收及其测序第35-36页
        2.3.3 B.cereusLJ01中NiR的生物信息学分析第36页
        2.3.4 重组质粒pET-28a(+)-nir和pET-32a(+)-nir的构建第36-41页
            2.3.4.1 NiR编码基因的PCR产物和质粒的酶切及其切胶回收第36-38页
            2.3.4.2 NiR编码基因的PCR产物和质粒的连接、转化第38页
            2.3.4.3 扩增菌株E.coliTop10感受态细胞的制备与转化第38-39页
            2.3.4.4 克隆鉴定第39-41页
        2.3.5 重组子pET-28a(+)-nir-BL21(DE3)和pET-32a(+)-nir-BL21(DE3)的构建..第41页
        2.3.6 重组子中NiR的试表达第41-44页
            2.3.6.1 NiR的诱导表达第41-42页
            2.3.6.2 NiR的镍柱亲和层析纯化第42-43页
            2.3.6.3 各洗脱组分的SDS-丙烯酰胺凝胶电泳测定第43-44页
        2.3.7 NiR编码基因对宿主细胞生长的影响第44页
    2.4 结果与分析第44-59页
        2.4.1 NiR的编码基因扩增与测序结果第44-48页
        2.4.2 NiR的生物信息学分析结果第48-53页
            2.4.2.1 NiR蛋白二级结构预测分析第48-50页
            2.4.2.2 NiR蛋白跨膜螺旋分析和信号肽分析第50页
            2.4.2.3 NiR蛋白的疏水性分析第50-51页
            2.4.2.4 NiR蛋白的三级结构预测分析第51-53页
        2.4.3 重组子菌落PCR鉴定第53页
        2.4.4 NiR在不同质粒和不同温度下的表达结果分析第53-57页
        2.4.5 NiR的编码基因对宿主细胞生长的影响结果分析第57-59页
    2.5 本章小结第59-60页
第三章 基因工程菌产酶培养基成分及发酵条件的优化第60-78页
    3.1 引言第60页
    3.2 实验材料与仪器第60-61页
        3.2.1 主要试剂第60-61页
        3.2.2 主要仪器第61页
        3.2.3 常用溶液及培养基第61页
            3.2.3.1 培养基第61页
            3.2.3.2 常用溶液第61页
    3.3 研究方法第61-64页
        3.3.1 培养基成分的优化第61-63页
            3.3.1.1 碳源第61-62页
            3.3.1.2 氮源第62页
            3.3.1.3 无机盐第62-63页
        3.3.2 Plackett-Burman试验和响应面法优化培养基成分第63页
        3.3.3 诱导条件的优化第63-64页
            3.3.3.1 诱导剂IPTG浓度的优化第63页
            3.3.3.2 诱导温度的优化第63页
            3.3.3.3 诱导时间的优化第63-64页
        3.3.4 响应面法优化诱导条件第64页
    3.4 结果与分析第64-77页
        3.4.1 培养基成分的单因素优化第64-66页
            3.4.1.1 碳源对重组菌生长的影响第64-65页
            3.4.1.2 氮源对重组菌生长的影响第65-66页
            3.4.1.3 无机盐对重组菌生长的影响第66页
        3.4.2 Plackett-Burman试验结果第66-67页
        3.4.3 生物量的Box-Behnken实验设计及响应面分析第67-69页
        3.4.4 生物量的响应面因子交互作用结果分析第69-71页
        3.4.5 诱导条件的单因素优化第71-73页
            3.4.5.1 诱导剂IPTG浓度对重组NiR可溶性表达的影响第71-72页
            3.4.5.2 诱导温度对重组NiR可溶性表达的影响第72页
            3.4.5.3 诱导时间对重组NiR可溶性表达的影响第72-73页
        3.4.6 产酶量的Box-Behnken实验设计及响应面分析第73-75页
        3.4.7 产酶量的响应面因子交互作用结果分析第75-77页
    3.5 本章小结第77-78页
第四章 基因工程菌中NiR的纯化和酶学性质研究第78-98页
    4.1 引言第78页
    4.2 材料与仪器第78-80页
        4.2.1 主要试剂第78-79页
        4.2.2 主要仪器第79页
        4.2.3 培养基和常用溶液第79-80页
            4.2.3.1 培养基第79页
            4.2.3.2 常用溶液第79-80页
        4.2.4 NiR的测定第80页
            4.2.4.1 NiR的含量测定第80页
            4.2.4.2 NiR的酶活力单位定义第80页
            4.2.4.3 NiR的比活力计算公式第80页
    4.3 实验方法第80-85页
        4.3.1 重组NiR的诱导表达第80-81页
        4.3.2 重组NiR的镍柱亲和层析第81页
        4.3.3 重组NiR的酶学理化性质检测第81-83页
            4.3.3.1 重组NiR最适反应温度的测定第81-82页
            4.3.3.2 重组NiR最适反应pH值的测定第82页
            4.3.3.3 金属离子对重组NiR反应的影响第82页
            4.3.3.4 米氏常数K_m值的测定第82-83页
        4.3.4 重组NiR的脱盐和离子交换层析分离第83-84页
        4.3.5 重组NiR的凝胶过滤层析分离第84页
        4.3.6 重组NiR的结晶条件筛选第84-85页
        4.3.7 重组NiR的凝胶渗透色谱检测第85页
    4.4 结果与分析第85-97页
        4.4.1 重组NiR的镍柱亲和层析纯化结果分析第85-87页
        4.4.2 重组NiR的酶学性质研究结果分析第87-91页
            4.4.2.1 重组NiR的最适反应温度第87-88页
            4.4.2.2 重组NiR的最适反应pH第88-89页
            4.4.2.3 金属离子对重组NiR的影响第89-91页
            4.4.2.4 米氏常数K_m值的测定第91页
        4.4.3 重组NiR的进一步纯化结果第91-95页
            4.4.3.1 重组NiR的脱盐第92-93页
            4.4.3.2 重组NiR的阴离子交换层析第93-94页
            4.4.3.3 重组NiR的凝胶排阻层析纯化第94-95页
        4.4.4 重组NiR的GPC检测结果第95-96页
        4.4.5 重组NiR结晶条件筛选的结果第96-97页
    4.5 本章小结第97-98页
结论与展望第98-101页
    一、结论第98-99页
    二、创新之处第99-100页
    三、展望第100-101页
参考文献第101-120页
攻读硕士学位期间取得的研究成果第120-122页
致谢第122-123页
附件第123页

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