| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 缩略符号对照表 | 第6-9页 |
| 1 绪论 | 第9-15页 |
| 1.1 功能性低聚糖与低聚果糖 | 第9-10页 |
| 1.1.1 功能性低聚糖 | 第9页 |
| 1.1.2 低聚果糖结构与功能 | 第9-10页 |
| 1.2 肠道菌群与双歧杆菌 | 第10-12页 |
| 1.2.1 肠道菌群的组成 | 第10页 |
| 1.2.2 肠道微生物功能 | 第10页 |
| 1.2.3 益生菌 | 第10-11页 |
| 1.2.4 双歧杆菌 | 第11-12页 |
| 1.3 低聚果糖对肠道菌群的调节作用与机制 | 第12-13页 |
| 1.4 立题背景和意义 | 第13页 |
| 1.5 本课题研究的主要内容 | 第13-15页 |
| 2 材料与方法 | 第15-21页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第15页 |
| 2.1.1 试剂 | 第15页 |
| 2.1.2 培养基 | 第15页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第15页 |
| 2.2 主要仪器与设备 | 第15-16页 |
| 2.3 实验方法 | 第16-20页 |
| 2.3.1 低聚果糖干预的动物实验设计 | 第16-17页 |
| 2.3.2 血清生化指标的测定 | 第17页 |
| 2.3.3 盲肠、结肠的总重与壁重 | 第17页 |
| 2.3.4 内容物pH测定 | 第17页 |
| 2.3.5 粪便与内容物SCFAs浓度测定 | 第17-18页 |
| 2.3.6 细菌基因组的提取 | 第18页 |
| 2.3.7 V3-V4区PCR扩增 | 第18页 |
| 2.3.8 groEL基因PCR扩增 | 第18页 |
| 2.3.9 产物胶回收与定量、文库构建和上机测序 | 第18-19页 |
| 2.3.10 下机数据处理 | 第19页 |
| 2.3.11 利用低聚果糖的细菌分离与鉴定 | 第19页 |
| 2.3.12 利用低聚果糖的细菌16S rDNA鉴定 | 第19页 |
| 2.3.13 HPLC法测定菌液培养上清液中的FOS | 第19-20页 |
| 2.3.14 细菌基因草图分析 | 第20页 |
| 2.3.15 双歧杆菌的选择性培养基 | 第20页 |
| 2.3.16 双歧杆菌与肠球菌的混合培养 | 第20页 |
| 2.4 统计学分析 | 第20-21页 |
| 3 结果与讨论 | 第21-44页 |
| 3.1 小鼠体重与进食量 | 第21页 |
| 3.2 小鼠血清生化指标 | 第21-22页 |
| 3.3 粪便中SCFAs浓度 | 第22页 |
| 3.4 低聚果糖对小鼠粪便菌群组成的影响 | 第22-27页 |
| 3.4.1 低聚果糖对粪便菌群门和属水平组成的影响 | 第23-26页 |
| 3.4.2 低聚果糖对粪便中双歧杆菌组成的影响 | 第26-27页 |
| 3.5 盲肠、结肠的总重与壁重 | 第27页 |
| 3.6 内容物中SCFAs含量 | 第27-29页 |
| 3.7 内容物pH | 第29-30页 |
| 3.8 低聚果糖对肠道粘膜与内容物菌群组成的影响 | 第30-35页 |
| 3.8.1 低聚果糖对肠道粘膜与内容物菌群门水平组成的影响 | 第30-33页 |
| 3.8.2 低聚果糖对肠道粘膜与内容物菌群属水平组成的影响 | 第33-34页 |
| 3.8.3 低聚果糖对肠道粘膜与内容物中双歧杆菌组成的影响 | 第34-35页 |
| 3.9 利用低聚果糖细菌的分离与鉴定 | 第35-36页 |
| 3.10 利用低聚果糖细菌在培养基中生长特性 | 第36-38页 |
| 3.11 利用低聚果糖细菌基因草图分析 | 第38-40页 |
| 3.12 双歧杆菌选择性培养基筛选 | 第40-41页 |
| 3.13 双歧杆菌与肠球菌的混合培养 | 第41-44页 |
| 主要结论与展望 | 第44-46页 |
| 主要结论 | 第44-45页 |
| 展望 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-55页 |
| 附录Ⅰ：作者攻读硕士学位期间发表的论文 | 第55-56页 |
| 附录Ⅱ | 第56-64页 |
