| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 引言 | 第12-20页 |
| 1.1 概述 | 第12-13页 |
| 1.2 绿豆蛋白研究现状 | 第13-14页 |
| 1.2.1 绿豆蛋白的提取方法 | 第13页 |
| 1.2.2 绿豆蛋白的功能特性及理化性质 | 第13-14页 |
| 1.3 绿豆生物活性肽的研究进展 | 第14-18页 |
| 1.3.1 绿豆生物活性肽的提取方法 | 第14-15页 |
| 1.3.2 绿豆多肽的功能特性及理化性质 | 第15-16页 |
| 1.3.3 绿豆活性肽的生物活性 | 第16-17页 |
| 1.3.4 自由基、氧化损伤与抗氧化剂 | 第17-18页 |
| 1.4 本研究的目的与意义 | 第18-19页 |
| 1.5 本研究的主要内容及创新性 | 第19-20页 |
| 1.5.1 主要内容 | 第19页 |
| 1.5.2 创新点 | 第19-20页 |
| 第2章 绿豆蛋白制备工艺条件的优化 | 第20-30页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 仪器与试剂 | 第20-21页 |
| 2.2.1 仪器设备 | 第20-21页 |
| 2.2.2 材料试剂 | 第21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-24页 |
| 2.3.1 蛋白质含量测定 | 第21-22页 |
| 2.3.2 绿豆总蛋白的提取 | 第22-23页 |
| 2.3.3 提取率计算 | 第23页 |
| 2.3.4 响应面优化试验设计 | 第23-24页 |
| 2.4 数据分析 | 第24页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第24-29页 |
| 2.5.1 绿豆总蛋白(MPI)提取条件的优化 | 第24-25页 |
| 2.5.2 模型拟合 | 第25-27页 |
| 2.5.3 响应面分析 | 第27-28页 |
| 2.5.4 模型的验证 | 第28-29页 |
| 2.6 本章小结 | 第29-30页 |
| 第3章 绿豆蛋白的功能及理化性质研究 | 第30-44页 |
| 3.1 引言 | 第30-31页 |
| 3.2 仪器与试剂 | 第31页 |
| 3.2.1 仪器设备 | 第31页 |
| 3.2.2 材料试剂 | 第31页 |
| 3.3 实验方法 | 第31-34页 |
| 3.3.1 绿豆清蛋白的提取 | 第31-32页 |
| 3.3.2 溶解性 | 第32页 |
| 3.3.3 持水性 | 第32-33页 |
| 3.3.4 吸油性 | 第33页 |
| 3.3.5 乳化及乳化稳定性 | 第33页 |
| 3.3.6 起泡能力和稳定性 | 第33页 |
| 3.3.7 紫外光谱扫描 | 第33页 |
| 3.3.8 红外光谱扫描 | 第33-34页 |
| 3.3.9 圆二色谱分析 | 第34页 |
| 3.3.10 氨基酸分析 | 第34页 |
| 3.4 数据处理 | 第34页 |
| 3.5 结果与分析 | 第34-43页 |
| 3.5.1 蛋白含量及提取率 | 第34-35页 |
| 3.5.2 溶解性 | 第35-36页 |
| 3.5.3 持水性 | 第36页 |
| 3.5.4 吸油性 | 第36-37页 |
| 3.5.5 乳化性及乳化稳定性 | 第37-38页 |
| 3.5.6 发泡能力及发泡稳定性 | 第38页 |
| 3.5.7 紫外光谱分析 | 第38-39页 |
| 3.5.8 FT-IR | 第39-40页 |
| 3.5.9 圆二色谱分析 | 第40-41页 |
| 3.5.10 氨基酸分析 | 第41-43页 |
| 3.6 本章小结 | 第43-44页 |
| 第4章 绿豆蛋白酶解物的制备及其抗氧化活性研究 | 第44-66页 |
| 4.1 绪论 | 第44-45页 |
| 4.2 仪器与试剂 | 第45-46页 |
| 4.2.1 仪器设备 | 第45-46页 |
| 4.2.2 材料试剂 | 第46页 |
| 4.3 实验方法 | 第46-51页 |
| 4.3.1 绿豆蛋白酶解物的制备流程和方法 | 第46-47页 |
| 4.3.2 水解度的测定 | 第47-48页 |
| 4.3.3 三氯乙酸中可溶性氮含量(TCA-NSI) | 第48页 |
| 4.3.4 绿豆蛋白及酶解物的基本成分分析 | 第48页 |
| 4.3.5 绿豆蛋白酶解物的分离纯化 | 第48页 |
| 4.3.6 绿豆蛋白酶解物得率的计算 | 第48页 |
| 4.3.7 紫外光谱与红外光谱分析 | 第48-49页 |
| 4.3.8 圆二色谱 | 第49页 |
| 4.3.9 SEM | 第49页 |
| 4.3.10 粒度分析 | 第49页 |
| 4.3.11 氨基酸组成分析 | 第49页 |
| 4.3.12 抗氧化活性 | 第49-51页 |
| 4.3.13 血管紧张素转换酶(ACE)抑制活性 | 第51页 |
| 4.4 数据处理 | 第51-52页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第52-64页 |
| 4.5.1 蛋白酶的选择 | 第52-53页 |
| 4.5.2 基本成分分析 | 第53-54页 |
| 4.5.3 绿豆蛋白酶解物的含量 | 第54页 |
| 4.5.4 紫外光谱分析 | 第54-55页 |
| 4.5.5 FT-IR | 第55-56页 |
| 4.5.6 圆二色谱 | 第56-57页 |
| 4.5.7 氨基酸分析 | 第57-58页 |
| 4.5.8 SEM分析 | 第58-59页 |
| 4.5.9 粒度分析 | 第59-60页 |
| 4.5.10 DPPH自由基的清除能力 | 第60-61页 |
| 4.5.11 羟基自由基的清除能力 | 第61页 |
| 4.5.12 超氧阴离子的清除能力 | 第61-62页 |
| 4.5.13 还原能力测定 | 第62页 |
| 4.5.14 Fe~(2+)螯合活性 | 第62-63页 |
| 4.5.15 ACE抑制活性 | 第63-64页 |
| 4.6 本章小结 | 第64-66页 |
| 第5章 绿豆蛋白酶解物对NCTC1469细胞氧化损伤的保护作用 | 第66-78页 |
| 5.1 引言 | 第66-67页 |
| 5.2 仪器与试剂 | 第67-68页 |
| 5.2.1 仪器设备 | 第67页 |
| 5.2.2 材料试剂 | 第67-68页 |
| 5.3 实验方法 | 第68-69页 |
| 5.3.1 细胞培养 | 第68页 |
| 5.3.2 细胞毒性检测测定 | 第68页 |
| 5.3.3 H_2O_2诱导肝细胞氧化损伤的最佳浓度、时间的测定 | 第68页 |
| 5.3.4 CCK-8法测定细胞增殖活性 | 第68页 |
| 5.3.5 绿豆蛋白酶解物对细胞分泌的超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)和乳酸脱氢酶(LDH)的影响 | 第68-69页 |
| 5.3.6 还原型谷胱甘肽(GSH)含量的测定 | 第69页 |
| 5.3.7 ROS含量的测定 | 第69页 |
| 5.4 统计分析 | 第69页 |
| 5.5 实验结果与讨论 | 第69-77页 |
| 5.5.1 绿豆蛋白酶解物对NCTC1469细胞的毒性测定 | 第69-70页 |
| 5.5.2 H_2O_2诱导的肝细胞氧化损伤的最佳浓度、时间的测定 | 第70-71页 |
| 5.5.3 绿豆蛋白酶解物对H_2O_2诱导肝细胞氧化损伤的影响 | 第71-72页 |
| 5.5.4 蛋白酶解物对NCTC1469细胞内MDA、GSH、SOD及LDH活性的影响 | 第72-75页 |
| 5.5.5 MBPHs-I对NCTC1469细胞ROS产生的影响 | 第75-77页 |
| 5.6 本章小结 | 第77-78页 |
| 第6章 结论与展望 | 第78-80页 |
| 6.1 结论 | 第78-79页 |
| 6.2 进一步的研究方向 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-89页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第89页 |
