| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 缩略词 | 第8-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-22页 |
| 1.1 黄曲霉毒素 B_1 | 第13-16页 |
| 1.1.1 AFB_1的毒性 | 第13-15页 |
| 1.1.2 AFB_1毒性的化学预防 | 第15-16页 |
| 1.2 芦荟 | 第16-20页 |
| 1.2.1 芦荟多糖及其生理活性 | 第17-19页 |
| 1.2.2 芦荟苷及其生理活性 | 第19-20页 |
| 1.3 本课题的研究目的及意义 | 第20-21页 |
| 1.4 本课题的主要研究内容 | 第21-22页 |
| 第二章 芦荟对 AFB_1致大鼠肝损伤的干预作用初探 | 第22-33页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.3.1 主要溶液的配制 | 第23页 |
| 2.3.2 库拉索芦荟全叶粉制备 | 第23页 |
| 2.3.3 实验动物分组及处理 | 第23-24页 |
| 2.3.4 肝组织病理学检验(HE 染色) | 第24页 |
| 2.3.5 血清肝功能指标的测定 | 第24页 |
| 2.3.6 肝组织脂质过氧化产物 MDA 的测定 | 第24页 |
| 2.3.7 肝组织抗氧化指标的测定 | 第24-25页 |
| 2.3.8 肝组织 II 相代谢酶 GST 的测定 | 第25页 |
| 2.3.9 数据处理与分析 | 第25页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第25-31页 |
| 2.4.1 大鼠存活及生长状况 | 第25页 |
| 2.4.2 大鼠体重变化及脏器指数 | 第25-26页 |
| 2.4.3 大鼠肝组织病理学变化 | 第26-27页 |
| 2.4.4 库拉索芦荟全叶粉对大鼠血清肝功能指标的影响 | 第27-29页 |
| 2.4.5 库拉索芦荟全叶粉对大鼠肝脏脂质过氧化的影响 | 第29页 |
| 2.4.6 库拉索芦荟全叶粉对大鼠肝脏抗氧化酶活性的影响 | 第29-30页 |
| 2.4.7 库拉索芦荟全叶粉对大鼠肝脏 GSH 及 II 相酶 GST 水平的影响 | 第30-31页 |
| 2.5 本章小结 | 第31-33页 |
| 第三章 芦荟多糖的分离纯化及其理化性质、结构研究 | 第33-55页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第33-34页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第33-34页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第34页 |
| 3.3 实验方法 | 第34-39页 |
| 3.3.1 主要溶液的配制 | 第34-35页 |
| 3.3.2 芦荟多糖的分离 | 第35页 |
| 3.3.3 芦荟多糖的柱纯化 | 第35-36页 |
| 3.3.4 颜色反应及溶解度分析 | 第36-37页 |
| 3.3.5 多糖纯度鉴定 | 第37页 |
| 3.3.6 总糖及 O-乙酰基含量的测定 | 第37页 |
| 3.3.7 分子量测定 | 第37页 |
| 3.3.8 单糖组分分析 | 第37-38页 |
| 3.3.9 红外光谱分析 | 第38页 |
| 3.3.10 高碘酸氧化和 Smith 降解分析 | 第38页 |
| 3.3.11 核磁共振(NMR)分析 | 第38-39页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第39-53页 |
| 3.4.1 芦荟多糖 AP 常规理化性质分析 | 第39-40页 |
| 3.4.2 芦荟多糖 AP 的分级与纯化 | 第40-42页 |
| 3.4.3 AP-1AA 和 AP-1C 的纯度鉴定 | 第42-43页 |
| 3.4.4 AP-1AA 和 AP-1C 的常规理化性质 | 第43页 |
| 3.4.5 AP-1AA 和 AP-1C 的总糖及 O-乙酰基含量 | 第43页 |
| 3.4.6 AP-1AA 和 AP-1C 的分子量及单糖组成 | 第43-44页 |
| 3.4.7 AP-1AA 和 AP-1C 的高碘酸氧化-Smith 降解分析 | 第44-45页 |
| 3.4.8 AP-1AA 和 AP-1C 的红外图谱分析 | 第45-46页 |
| 3.4.9 AP-1AA 和 AP-1C 的 NMR 分析 | 第46-53页 |
| 3.5 本章小结 | 第53-55页 |
| 第四章 芦荟多糖和芦荟苷对急性 AFB_1致大鼠肝损伤的干预及其作用机制 | 第55-79页 |
| 4.1 引言 | 第55-56页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第56页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第56页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第56页 |
| 4.3 实验方法 | 第56-61页 |
| 4.3.1 主要溶液的配制 | 第56页 |
| 4.3.2 实验动物处理 | 第56-57页 |
| 4.3.3 肝组织病理学检验(HE 染色) | 第57页 |
| 4.3.4 血清肝功能指标的测定 | 第57页 |
| 4.3.5 血浆及肝组织中 ROS 的测定 | 第57页 |
| 4.3.6 肝组织生化指标的测定 | 第57-58页 |
| 4.3.7 肝脏线粒体的制备及线粒体膜电位的测定 | 第58页 |
| 4.3.8 总 RNA 的提取及实时荧光定量 PCR | 第58-60页 |
| 4.3.9 肝脏微粒体的制备 | 第60页 |
| 4.3.10 肝脏 I 相药物代谢酶 CYP1A2 活性的测定 | 第60页 |
| 4.3.11 肝脏 I 相药物代谢酶 CYP3A4 活性的测定 | 第60页 |
| 4.3.12 数据处理与分析 | 第60-61页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第61-77页 |
| 4.4.1 AP 对急性 AFB_1致大鼠肝损伤的干预及其作用机制 | 第61-69页 |
| 4.4.2 芦荟苷对急性 AFB_1致大鼠肝损伤的干预及其作用机制 | 第69-77页 |
| 4.5 本章小结 | 第77-79页 |
| 第五章 芦荟多糖和芦荟苷对亚慢性 AFB_1致大鼠肝损伤的干预及其作用机制 | 第79-103页 |
| 5.1 引言 | 第79页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第79页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第79页 |
| 5.2.2 主要仪器 | 第79页 |
| 5.3 实验方法 | 第79-83页 |
| 5.3.1 主要溶液的配制 | 第79-80页 |
| 5.3.2 实验动物处理 | 第80-81页 |
| 5.3.3 组织病理学检验(HE 染色) | 第81页 |
| 5.3.4 肝组织免疫组化检测 | 第81-82页 |
| 5.3.5 血清生化指标的测定 | 第82页 |
| 5.3.6 肝组织生化指标的测定 | 第82页 |
| 5.3.7 总 RNA 的提取及实时荧光定量 PCR | 第82页 |
| 5.3.8 肝脏微粒体的制备 | 第82页 |
| 5.3.9 肝脏 I 相药物代谢酶 CYP1A2 及 3A4 活性的测定 | 第82页 |
| 5.3.10 数据处理与分析 | 第82-83页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第83-101页 |
| 5.4.1 AP 对亚慢性 AFB_1致大鼠肝损伤的干预及其作用机制 | 第83-92页 |
| 5.4.2 芦荟苷对亚慢性 AFB_1致大鼠肝损伤的干预及其作用机制 | 第92-101页 |
| 5.5 本章小结 | 第101-103页 |
| 主要结论与展望 | 第103-105页 |
| 主要结论 | 第103-104页 |
| 展望 | 第104-105页 |
| 论文主要创新点 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106-107页 |
| 参考文献 | 第107-117页 |
| 附录：作者在攻读博士学位期间成果清单 | 第117页 |
