| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 中英文缩写词对照表 | 第8-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-25页 |
| 1.1 全氟及多氟烷基化合物概述 | 第13-20页 |
| 1.1.1 PFASs在中国的生产现状 | 第15-16页 |
| 1.1.2 PFOA和PFOS在体内的吸收 | 第16页 |
| 1.1.3 PFOA和PFOS在体内的分布 | 第16-17页 |
| 1.1.4 PFOA和PFOS在体内的排泄 | 第17页 |
| 1.1.5 PFASs的毒性及危害 | 第17-20页 |
| 1.2 目前缓解PFASs毒性研究进展 | 第20-21页 |
| 1.3 乳酸菌缓解PFASs毒性的潜力 | 第21-23页 |
| 1.3.1 乳酸菌简介 | 第21页 |
| 1.3.2 乳酸菌修复机体氧化损伤的能力 | 第21-22页 |
| 1.3.3 乳酸菌对环境有害物质的吸附能力 | 第22-23页 |
| 1.3.4 PFASs在人体内存在肝肠循环 | 第23页 |
| 1.4 论文立题背景及意义 | 第23-24页 |
| 1.5 论文的主要研究内容 | 第24-25页 |
| 第二章 乳酸菌的细胞抗氧化模型的构建 | 第25-45页 |
| 2.1 引言 | 第25-26页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第26-27页 |
| 2.2.1 主要材料 | 第26页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第26-27页 |
| 2.2.3 主要仪器与设备 | 第27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-29页 |
| 2.3.1 乳酸菌菌悬液、发酵上清液和无细胞提取物的制备 | 第27页 |
| 2.3.2 DPPH自由基清除能力 | 第27页 |
| 2.3.3 HRS活性分析 | 第27-28页 |
| 2.3.4 还原能力 | 第28页 |
| 2.3.5 抑制脂质过氧化 | 第28页 |
| 2.3.6 细胞毒性试验 | 第28页 |
| 2.3.7 CAA分析 | 第28-29页 |
| 2.3.8 数据分析 | 第29页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第29-43页 |
| 2.4.1 乳酸菌菌悬液CAA活性分析 | 第29-32页 |
| 2.4.2 乳酸菌发酵上清液CAA活性测定 | 第32-37页 |
| 2.4.3 RAW264.7、Caco-2 和EA.hy926细胞为模型的乳酸菌CAA活性分析 | 第37-42页 |
| 2.4.4 CAA分析乳酸菌无细胞提取物活性 | 第42-43页 |
| 2.5 本章小结 | 第43-45页 |
| 第三章 体外筛选具有缓解PFOA或PFOS毒性作用的乳酸菌 | 第45-59页 |
| 3.1 引言 | 第45页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第45-46页 |
| 3.2.1 主要材料与试剂 | 第45-46页 |
| 3.2.2 主要仪器与设备 | 第46页 |
| 3.3 实验方法 | 第46-49页 |
| 3.3.1 菌株培养 | 第46-47页 |
| 3.3.2 AI400树脂预处理 | 第47页 |
| 3.3.3 菌体干湿重比测定 | 第47页 |
| 3.3.4 细胞培养 | 第47页 |
| 3.3.5 乳酸菌菌株对PFOA或PFOS的耐受性 | 第47页 |
| 3.3.6 吸附实验 | 第47-48页 |
| 3.3.7 乳酸菌菌株耐酸耐胆盐特性 | 第48页 |
| 3.3.8 乳酸菌菌株的CAA活性 | 第48页 |
| 3.3.9 筛选菌株对Caco-2 细胞的粘附特性 | 第48-49页 |
| 3.3.10 数据统计分析 | 第49页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第49-57页 |
| 3.4.1 乳酸菌菌株对PFOA或PFOS的耐受能力 | 第49-50页 |
| 3.4.2 乳酸菌菌株对PFOA吸附能力分析 | 第50-52页 |
| 3.4.3 乳酸菌菌株对PFOS吸附能力分析 | 第52-54页 |
| 3.4.4 乳酸菌菌株耐酸耐胆盐能力 | 第54-55页 |
| 3.4.5 筛选菌株的细胞抗氧化活性 | 第55-57页 |
| 3.4.6 筛选菌株对Caco-2 细胞的粘附作用 | 第57页 |
| 3.5 本章小结 | 第57-59页 |
| 第四章 PFOA和PFOS暴露于C57BL/6J小鼠损伤模型的构建 | 第59-75页 |
| 4.1 引言 | 第59页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第59-60页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第59页 |
| 4.2.2 实验试剂和材料 | 第59-60页 |
| 4.2.3 主要仪器与设备 | 第60页 |
| 4.3 实验方法 | 第60-61页 |
| 4.3.1 急性毒性研究 | 第60页 |
| 4.3.2 亚慢性毒性研究 | 第60页 |
| 4.3.3 小鼠器官、血液及组织样品采集 | 第60-61页 |
| 4.3.4 组织病理学观察 | 第61页 |
| 4.3.5 生化指标分析 | 第61页 |
| 4.3.6 氧化应激分析 | 第61页 |
| 4.3.7 TUNEL检测 | 第61页 |
| 4.3.8 数据统计分析 | 第61页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第61-72页 |
| 4.4.1 PFOA对C57BL/6J小鼠的急性毒性试验 | 第61-62页 |
| 4.4.2 PFOS对C57BL/6J小鼠的急性毒性试验 | 第62页 |
| 4.4.3 PFOA对C57BL/6J小鼠的亚慢性毒性试验 | 第62-67页 |
| 4.4.4 PFOS对C57BL/6J小鼠的亚慢性毒性试验 | 第67-72页 |
| 4.5 本章小结 | 第72-75页 |
| 第五章 乳酸菌菌株对PFOA、PFOS急性毒性的缓解作用 | 第75-93页 |
| 5.1 引言 | 第75-76页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第76页 |
| 5.2.1 实验动物 | 第76页 |
| 5.2.2 实验试剂和材料 | 第76页 |
| 5.2.3 主要仪器与设备 | 第76页 |
| 5.3 实验方法 | 第76-79页 |
| 5.3.1 实验用乳酸菌菌株的培养及灌胃菌株的制备 | 第76页 |
| 5.3.2 动物分组及饲喂 | 第76-77页 |
| 5.3.3 尿液、粪便、血液和组织样品收集及器官比重测定， | 第77-78页 |
| 5.3.4 血清、粪便、肝肾组织中的PFOA、PFOS含量测定 | 第78页 |
| 5.3.5 血液生化参数及组织样品生理指标测定 | 第78页 |
| 5.3.6 血清炎症因子测定 | 第78页 |
| 5.3.7 组织病理学观察 | 第78-79页 |
| 5.3.8 数据统计分析 | 第79页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第79-90页 |
| 5.4.1 CCFM738缓解急性PFOA暴露毒性损伤 | 第79-85页 |
| 5.4.2 CCFM737缓解急性PFOS毒性损伤 | 第85-90页 |
| 5.5 本章小结 | 第90-93页 |
| 第六章 乳酸菌菌株对PFOA、PFOS亚慢性毒性的缓解作用 | 第93-111页 |
| 6.1 引言 | 第93页 |
| 6.2 材料与仪器 | 第93-94页 |
| 6.2.1 实验动物 | 第93页 |
| 6.2.2 实验试剂和材料 | 第93页 |
| 6.2.3 主要仪器与设备 | 第93-94页 |
| 6.3 实验方法 | 第94-95页 |
| 6.3.1 实验用乳酸菌的培养及灌胃乳酸菌的配置 | 第94页 |
| 6.3.2 动物分组及饲喂 | 第94-95页 |
| 6.3.3 血液及组织样品采集 | 第95页 |
| 6.3.4 小鼠体重及饲料消耗量变化 | 第95页 |
| 6.3.5 血清及肝功能相关生化指标检测 | 第95页 |
| 6.3.6 血清细胞因子相关指标检测 | 第95页 |
| 6.3.7 小鼠粪便及组织中PFASs含量的测定 | 第95页 |
| 6.3.8 小鼠肝脏和肾脏组织学观察 | 第95页 |
| 6.3.9 数据统计分析 | 第95页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第95-109页 |
| 6.4.1 CCFM738对PFOA亚慢性暴露的影响 | 第95-102页 |
| 6.4.2 CCFM737对PFOS亚慢性暴露的影响 | 第102-109页 |
| 6.5 本章小结 | 第109-111页 |
| 主要结论与展望 | 第111-114页 |
| 主要结论 | 第111-113页 |
| 展望 | 第113-114页 |
| 论文创新点 | 第114-115页 |
| 致谢 | 第115-116页 |
| 参考文献 | 第116-131页 |
| 附录：作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第131页 |
